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2x Realab Green PCR Fast mixture通用型
供貨周期 | 一周 | 貨號 | R0212 |
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2x示蹤型定量試劑盒
貨號:R0212
儲存條件:長期保存請于 -20℃避光保存,解凍后可在 4℃避光條件下穩定存放一個月,盡量避免反復凍融。
產品組分:
組分 | 貨號 | 500T | 1000T | 2500T |
2x Visual SYBR qPCR mixture Universal | R0212-A | 4*1.25ml | 8*1.25ml | 20*1.25ml |
10× Dilution Buffer | R0212-B | 1ml | 2*1ml | 5*1ml |
產品描述
2x Visual Realab Green PCR Fast mixture通用型(示蹤型定量試劑盒)是SYBR Green l嵌合染料法專用 qPCR 試劑,為2x預混液,包含除引物和 DNA 樣品以外的所有 qPCR 組分,可減少操作步驟,縮短加樣時間,降低污染幾率。其核心組分是經抗體修飾的熱啟動 Tag DNA 聚合酶,配合精心優化的 Buffer 體系以及 PCR 反應促進因子,特異性強、擴增效率高,可有效抑制非特異性擴增,對寬廣濃度范圍的模板進行準確定量,獲得穩定可靠的 qPCR結果。本品已含有通用校正染料,與絕大多數 qPCR 設備兼容,不需要額外添加染料來校正儀器。
本品可利用不同染料混合后產生的變色效應,追蹤移液過程,從而顯著減少移液錯誤。2x Visual Realab Green PCR Fast mixture通用型中包含藍色染料,10x Dilution Buffer 中包含黃色染料。當 2x Visual Realab Green PCR Fast mixture通用型(藍色)中加入了用 Dilution Buffer稀釋的模板(黃色)后會產生藍色→綠色的變色效應,從而可以根據液體顏色準確判斷是否已加入模板。
使用方法:
1. 模板稀釋
使用過程中,如需要進行移液追蹤,則根據下表選擇合適的方式提前添加 Dilution Buffer 至模板中,然后進行 qPCR 檢測;如不需要進行移液追蹤,則不使用 Dilution Buffer 即可。
DNA 模板狀態 | 10× Dilution Buffer 使用方式 | 模版中Dilution Buffer 濃度 |
固體 | 使用 ddH,0 將 10x Dilution Buffer 稀釋至 1x,使用 1xDilution Buffer溶解 DNA | 1x |
液體 | 如有必要,先使用 ddH20 將模板稀釋至目標濃度,然后在每 9μl模板中加入 1ul 10x Dilution Buffer | 1x |
2. 建議的 qPCR 反應體系
試劑 | 使用量 | 終濃度 |
2x Visual SYBR qPCR mixture Universal | 10ul | 1 x |
正向引物(10uM)a | 0.4ul | |
反向引物(10uM)a | 0.4ul | |
DNA模版b | X ul | |
Nuclease-Free Water | To 20ul |
a. 通常推薦的引物終濃度為 0.2 μM,可在 0.1~1 μM 范圍內調整;
b. 如使用 Dilution Buffer 進行加樣追蹤,模板體積請勿超出2~5μl/20 μl reaction。
如果模板用量低于 2 μl/20 μl reaction,會造成顯色偏淡,影響追蹤效果;如果模板用量高于 5 μl/20 μl reaction,Dilution Buffer 中的成分可能會干擾 qPCR 反應。不同種類 DNA 模板中含有的靶基因拷貝數目不同,必要時可進行梯度稀釋,以確定最佳的 DNA 模板添加量。
注:當模板類型為未稀釋 cDNA 原液時,不論其是否包含 1× Dilution Buffer,使用體積均不應超過 qPCR 反應總體積的 1/10,即 2 μl/20 μl reaction。
3. qPCR 反應程序(可根據機型適當調整)
兩步法
步驟 | 溫度 | 時間 | 循環 |
預變性 | 95℃ | 30s | |
變性 | 95℃ | 10s | 40cycles |
退火 & 延伸a | 60℃ | 30s | |
溶解曲線 | 使用儀器默認采集程序 |
三步法
步驟 | 溫度 | 時間 | 循環 |
預變性 | 95℃ | 30s | |
變性 | 95℃ | 10s | 40 cycles |
退火a | 55~65℃ | 10s | |
延伸a | 72℃ | 30s | |
溶解曲線 | 使用儀器默認采集程序 |
a.根據引物的 Tm 值進行退火&延伸(退火)溫度的設定;若擴增片段在 200bp 以內,退火 &延伸(延伸)時間可以設置為 15 s;此外,退火&延伸(延伸)時間的設置還需根據您使用的 qPCR 儀所需要的最短數據采集時間自行調整。
4.實驗優化
① 引物濃度調整
當引物終濃度在 0.1~1.0 μM 范圍之間變化時,引物濃度越低,擴增特異性越高,但擴增效率會有所下降。
② 擴增程序優化
需提高擴增特異性,可使用兩步法程序或提高退火溫度;需提高擴增效率,可使用三步法程序或延長延伸時間。
5.引物設計原則
① 擴增產物長度建議控制在 80~200 bp;
② 引物長度為 18~25 bp;
③ 兩條 Tm 值相差不超過 1℃,Tm 值控制在 58~62℃;
④ 引物的 GC 含量控制在 40%~60%;
⑤ 引物 A、G、C、T 整體分布盡量要均勻,避開 T/C 或者 A/G 的連續結構(特別是 3' 端),3' 端最后一個堿基最好為 G 或者 C;
⑥ 避開引物內部或者兩條引物之間的互補序列;
⑦ 使用 NCBI BLAST功能檢索確認引物的特異性。
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