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僅供科研使用，不可用于臨床診斷和治療

凍存細胞接收后的處理：

1）干冰運輸，收到細胞后推薦直接復蘇，轉入液氮暫存可能導致細胞復蘇率降低；

2）收到細胞后，若發現干冰已經*揮發、凍存管瓶蓋破裂脫落,請立即拍照后與我們聯系。

復蘇細胞接收后的處理：

1）收到細胞后，請首先檢查培養瓶是否破損或漏液，培養液是否混濁，如有漏液及培養液混濁情況請立即拍照把圖片發給我們。

2）75%酒精消毒瓶身后放培養箱中靜置4-6h后，在顯微鏡下確認細胞狀態并拍照100倍和200倍的照片，若有貼壁細胞脫落，可收集上清離心，將沉淀用新的培養基接種至新的培養瓶或培養皿中。

3）建議收到當天不要消化處理，如果細胞長滿90%，可選擇傳代處理。

4）如您收到細胞3天內沒有反饋相關問題，出現的細胞問題將不提供免費重發服務。

注：發貨用培養基不可再次用來培養細胞

細胞培養方法：

1、細胞傳代：細胞密度達到80-90%時即可傳代

①棄去培養上清，用PBS或生理鹽水清洗1-2次；

②加入1ml0.25%胰酶（T25瓶），使胰酶覆蓋整個瓶或皿，蓋好放入培養箱消化；

③細胞消化0.5-2min（具體時間根據鏡下形態判斷），顯微鏡下觀察細胞，細胞回縮，即將脫壁而未脫壁時（可用槍輕輕吹打確認細胞是否脫壁），加入培養基終止消化（若消化過度可能會對細胞存活率產生較大影響）；

④將細胞懸液1000RPM左右條件下離心4min，棄上清；

⑤用新鮮培養基重懸后加入培養瓶或皿中，T25培養瓶加6-8ml培養基；

⑥懸浮細胞直接離心收集，細胞沉淀重懸后分到新培養瓶中。

注：di一次傳代推薦1:2傳代，后續可根據細胞生長以及客戶需求自行確定。

2、細胞復蘇：

①將凍存管在37℃溫水中快速搖晃融化，時間1min左右，加入4-5ml培養基混勻；

②在1000RPM左右條件下離心4min，棄上清,加1-2ml培養基吹勻，將細胞懸液加入T25培養瓶或60mm培養皿中，補加適量培養基。

3、細胞凍存：待細胞生長狀態良好時進行細胞凍存

①棄去培養上清，用PBS或生理鹽水清洗1-2次，加入1ml0.25%胰酶（T25瓶），使胰酶覆蓋整個瓶或皿，蓋好放入培養箱消化；

②細胞消化0.5-2min（具體時間根據鏡下形態判斷），顯微鏡下觀察細胞，細胞回縮，即將脫壁而未脫壁時（可用槍輕輕吹打確認細胞是否脫壁），加入培養基終止消化（若消化過度可能會對細胞存活率產生較大影響）；

③將細胞懸液1000RPM左右條件下離心4min，棄上清，加1ml凍存液重懸細胞；

④將凍存管放入程序降溫盒，放入-80℃冰箱，4小時后將凍存管轉入液氮罐儲存。