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翌圣生物科技(上海)股份有限公司

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植物組織直接pcr試劑盒
參考價(jià): 1353
訂貨量: 1
具體成交價(jià)以合同協(xié)議為準(zhǔn)
  • 產(chǎn)品型號
  • Yeasen/翌圣生物 品牌
  • 生產(chǎn)商 廠商性質(zhì)
  • 上海市 所在地

訪問次數(shù):827更新時(shí)間:2023-02-21 17:10:43

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網(wǎng)址:
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產(chǎn)品簡介
供貨周期 現(xiàn)貨 貨號 10187ES70
應(yīng)用領(lǐng)域 生物產(chǎn)業(yè)
植物組織直接pcr試劑盒是一款可直接對不同類型植物葉片和種子進(jìn)行PCR擴(kuò)增的試劑盒,適應(yīng)性廣、穩(wěn)定性強(qiáng)。試劑盒采用*的裂解緩沖液體系,可以快速的裂解多種植物樣品并釋放出基因組DNA,不需要除去蛋白、RNA或次生代謝產(chǎn)物等,即可將釋放出的基因組DNA作為模板直接用于PCR反應(yīng)。此外,樣品使用量少,低至1 mm植物葉片或種子即可進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。
產(chǎn)品介紹

Plant Tissue Direct PCR Kit (With Dye)  

植物組織直接pcr試劑盒


產(chǎn)品信息

產(chǎn)品名稱

產(chǎn)品編號

規(guī)格

價(jià)格(元)

Plant Tissue Direct PCR Kit  (With Dye)

10187ES50

50 T

393.00

Plant Tissue Direct PCR Kit  (With Dye)

10187ES70

200 T

1353.00


產(chǎn)品描述

植物組織直接pcr試劑盒是一款可直接對不同類型植物葉片和種子進(jìn)行PCR擴(kuò)增的試劑盒,適應(yīng)性廣、穩(wěn)定性強(qiáng)。試劑盒采用*的裂解緩沖液體系,可以快速的裂解多種植物樣品并釋放出基因組DNA不需要除去蛋白、RNA或次生代謝產(chǎn)物等,即釋放出的基因組DNA作為模板直接用于PCR反應(yīng)。此外,樣品使用少,低至1 mm植物葉片或種子即可進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

本試劑盒中提供的2× Plant Master Mix具有很強(qiáng)的擴(kuò)增兼容性,能直接以待測樣品裂解液為模板,進(jìn)行高效特異性擴(kuò)增。該試劑為2倍濃縮PCR反應(yīng)混合液,包含了用于PCR擴(kuò)增除模板和引物外的所有組分,大大簡化操作過程,降低污染幾率。

該試劑盒可用于轉(zhuǎn)基因植株鑒定、植物基因分型等。


產(chǎn)品組分

類別

編號

組分

產(chǎn)品編號/規(guī)格

儲存

10187ES50(50 T)

10187ES70(200 T)

Part I

10187-A

Buffer P1

1.25 mL × 2

5 mL × 2

4℃

10187-B

Buffer P2

500 μL

1 mL × 2

4℃

Part II

10187-C

2× Plant Master Mixa

500 μL

1 mL × 2

-20℃

aPlant Master Mix包含熱啟動(dòng)Taq DNA聚合酶、dNTP混合物、MgCl2、反應(yīng)緩沖液、PCR反應(yīng)增強(qiáng)劑、優(yōu)化劑以及穩(wěn)定劑等同時(shí)包含電泳Loading Buffer, PCR完成之后可直接電泳。


運(yùn)輸方法

冰袋運(yùn)輸。


保存方法

1. 試劑10187-A【Buffer P1置于4保存

2. 試劑10187-B【Buffer P2】,中和裂解產(chǎn)物,利于更長時(shí)間保存樣本,置于4保存

3. 試劑10187-C【2 × Plant Master Mix】,-20℃保存,避免反復(fù)凍融。


操作方法


植物葉片

研磨裂解法:

研磨儀破碎:直徑5 mm左右的葉片置于50 μL Buffer P1中,用研磨儀加鋼珠(鋼珠直徑3mm左右,共2個(gè))破碎葉片(45 Hz,1 min),葉片破碎后溶液呈現(xiàn)綠色,瞬時(shí)離心,上清液請放在4℃?zhèn)溆茫?/span>1 μL用于PCR擴(kuò)增

槍頭搗碎:推薦使用幼嫩葉片。直徑5 mm左右的葉片置于50 μL Buffer P1中,用槍頭將葉片搗碎,搗碎后溶液呈現(xiàn)綠色,瞬時(shí)離心,上清液請放在4℃?zhèn)溆茫?/span>1 μL用于PCR擴(kuò)增

加熱裂解法:推薦使用幼嫩葉片。直徑5 mm左右的葉片置于50 μL Buffer P195加熱5-10 min(確保裂解液*浸沒葉片),較難裂解的葉片(老葉片)可適當(dāng)延長時(shí)間(10-20 min),加熱裂解后溶液呈現(xiàn)綠色,震蕩混勻,瞬時(shí)離心,上清液請放在4℃?zhèn)溆茫?/span>1 μL用于PCR擴(kuò)增

直接法:推薦使用幼嫩葉片。使用打孔器或者刀,將直徑1 mm左右葉片直接加入到PCR反應(yīng)體系中復(fù)雜樣本或者是長片段的擴(kuò)增,推薦使用直徑<1mm的葉片。


植物種子

加熱裂解法:用刀或者堅(jiān)硬的物體取直徑約1 mm左右的種子,將置于50 μL Buffer P1 中95加熱5-10 min較難裂解的種子可適當(dāng)延長時(shí)間(10-20 min),加熱后震蕩混勻,瞬時(shí)離心,底部呈現(xiàn)透明的糊狀,上清液請放在4℃?zhèn)溆茫?/span>1 μL上清液用于PCR擴(kuò)增

直接法用刀或者堅(jiān)硬的物體取直徑約1 mm左右的種子,將置于50 μL Buffer P1Buffer P1需要提前室溫下平衡20 min)中,用槍頭或者其他的方式搗碎種子,種子搗碎后溶液呈現(xiàn)乳白色,室溫靜置15 min,震蕩混勻,瞬時(shí)離心,上清液請放在4℃?zhèn)溆茫? μL上清液用于PCR擴(kuò)增


PCR反應(yīng)體系

組分

體積(μL)

體積(μL)

終濃度

2× Plant Master Mix

10

25

Forward Primer (10 μM)

0.5

1

0.2-0.25 μM

Reverse Primer (10 μM)

0.5

1

0.2-0.25 μM

裂解產(chǎn)物(DNA模板)

1

2

-

ddH2O

To 20

To 50

-

】:各組分使用前應(yīng)充分混勻

a模板加入量小于PCR反應(yīng)體系的5%,過多會(huì)嚴(yán)重抑制PCR反應(yīng),強(qiáng)烈推薦加入1 μL模板葉片直擴(kuò)優(yōu)先推薦研磨儀裂解法,種子直擴(kuò)優(yōu)先推薦加熱法。

b)引物終濃度0.2-0.25 μM可以得到較好結(jié)果。反應(yīng)性能較差時(shí),可在0.1-0.5 μM范圍內(nèi)調(diào)整引物濃度。

c反應(yīng)體系:推薦使用20 μL或50 μL,以保證目的基因擴(kuò)增的有效性和重復(fù)性

d體系配制:配制好PCR反應(yīng)體系,置于渦旋儀上渦旋混勻,瞬時(shí)離心將反應(yīng)液集于管底。

e對照反應(yīng):建議進(jìn)行PCR時(shí),設(shè)置陽性和陰性PCR對照反應(yīng)以便于排除假陽性或假陰性的干擾。

f)為了更穩(wěn)定的保存裂解后的模板,將轉(zhuǎn)移出來的上清液,按照裂解產(chǎn)物(DNA模板)Buffer P2 = 5:1的比例混合,混勻后-20保存,穩(wěn)定保存時(shí)間樣本狀態(tài)不同而有所不同。處理后的植物葉片種子上清液一周內(nèi)用于PCR擴(kuò)增,不用加Buffer P2上清液請保存在-20


PCR反應(yīng)條件

循環(huán)步驟

溫度

時(shí)間

循環(huán)數(shù)

預(yù)變性

94℃

5 min

1

變性

94℃

10 sec

35

退火

50-65℃

20 sec

延伸

72℃

1 min

終延伸

72℃

5 min

1

【注】:a)退火溫度:請參考引物的理論 Tm 值,退火溫度可設(shè)置低于引物理論值 2-5℃。

b)延伸時(shí)間需要根據(jù)片段的長度來確定,對于1 kb以內(nèi)的DNA///片段,建議延長時(shí)間為1 min

注意事項(xiàng)

1. 做葉片實(shí)驗(yàn)時(shí),建議使用新鮮采取的葉片組織,若長期冷凍組織,需-80℃保存,應(yīng)盡量避免反復(fù)凍融,以免造成模板降解,影響PCR效率。葉片組織以幼嫩為宜若為成熟的葉片,避免使用葉片主脈部位組織;做種子實(shí)驗(yàn)時(shí),不要用發(fā)霉的種子,發(fā)霉的種子很可能導(dǎo)致試驗(yàn)失敗。

2. 建議擴(kuò)增片段長度1 kb以內(nèi),以便擴(kuò)增效率///佳

3. 取樣時(shí)使用打孔器或者刀取適宜大小的樣本,樣本不同時(shí),打孔器或者刀每次處理樣本前需清洗干凈。

4. 對于葉片組織,建議取1-10 mm葉片,小會(huì)使PCR擴(kuò)增產(chǎn)量,過多會(huì)抑制PCR反應(yīng),采用加熱裂解法、槍頭搗碎研磨儀破碎的方式處理植物葉片,處理后震蕩離心,務(wù)必取上清液試驗(yàn),沉淀會(huì)嚴(yán)重抑制PCR反應(yīng)對于子組織,取1-3 mm的種子,小會(huì)使PCR擴(kuò)增產(chǎn)量,過多會(huì)嚴(yán)重抑制PCR反應(yīng),采用加熱裂解法裂解種子,處理后震蕩離心,務(wù)必取上清液試驗(yàn),沉淀會(huì)嚴(yán)重抑制PCR反應(yīng)。

5.為了您的安全和健康,請穿實(shí)驗(yàn)服并佩戴一次性手套操作。


常見問題與解決方法

常見問題

可能原因

解決方法

陽性對照、待測樣本均無條帶

PCR反應(yīng)體系或反應(yīng)條件不合適。

使用梯度PCR摸索PCR///佳反應(yīng)條件。

PCR試劑保存不當(dāng)失去活性。

2× PCR Mix應(yīng)保存于-20,使用時(shí)避免反復(fù)凍融。若使用頻繁,可在4短時(shí)間存放。

引物設(shè)計(jì)問題。

嘗試重新設(shè)計(jì)引物進(jìn)行檢查。

陽性對照有目的條帶,待測樣本無條帶或條帶弱。

裂解液、中和液加入比例不當(dāng),裂解混合液影響PCR體系的pH值。

正常條件下,中和后的裂解混合液的 pH 應(yīng)該在7-8左右(裂解產(chǎn)物和Buffer P2嚴(yán)格按照5:1的量進(jìn)行中和)。

樣本裂解混合液保存不當(dāng)或保存時(shí)間過久,DNA基因組已經(jīng)降解。

裂解混合液液可在4℃保存5天,盡量使用新制備的裂解液混合液進(jìn)行PCR。

模板加入量不適合。

在反應(yīng)體系<5%范圍內(nèi)優(yōu)化模板加入量。

PCR循環(huán)數(shù)不足。

適當(dāng)增加PCR的循環(huán)數(shù),推薦35-40循環(huán)為佳。因模板復(fù)雜,一般PCR反應(yīng)要比用純化的DNA模板多5-10個(gè)循環(huán)為佳。

非特異性擴(kuò)增

PCR退火溫度太低,循環(huán)數(shù)、引物濃度或模板濃度太高。

增加PCR退火溫度,降低PCR循環(huán)數(shù)、引物濃度或模板濃度。

PCR引物錯(cuò)配。

重新設(shè)計(jì)PCR引物。

配制PCR反應(yīng)體系時(shí)溫度太高或配制完成后放置時(shí)間太久。

PCR反應(yīng)體系的配制在低溫下進(jìn)行,配制完成后盡快進(jìn)行PCR擴(kuò)增反應(yīng)。

陰性對照出現(xiàn)目的條帶

操作工具或試劑污染。

實(shí)驗(yàn)所有試劑或器材均應(yīng)高壓滅菌。操作時(shí)應(yīng)小心輕柔,防止將靶序列吸入加樣槍內(nèi)或?yàn)R出離心管外。

樣本間交叉污染。

每個(gè)取樣器只對一個(gè)樣本使用;或取完一個(gè)樣本后,將取樣器刃口浸入2%的次氯酸鈉溶液中,反復(fù)涮洗,然后用干凈的紙巾擦干殘液。


相關(guān)產(chǎn)

產(chǎn)品名稱

貨號

規(guī)格

價(jià)格(元)

Animal Tissue Direct PCR Kit 動(dòng)物組織直接PCR試劑盒

10180ES50/70

50/200 T

383/1353

Mouse Tissue Direct PCR Kit 小鼠組織直接PCR試劑盒HOT

10181ES50/70

50/200 T

293/883

Animal Blood Direct PCR Kit 全血直接PCR試劑盒

10182ES50/70

50/200 T

292/883

Plant Tissue PCR Kit 植物組織直接PCR試劑盒HOT

10183ES50/70

50/200 T

353/1213

Animal Tissue Direct PCR Kit  (With Dye) 動(dòng)物組織直接PCR試劑盒

10184ES50/70

50/200 T

433/1453

Mouse Tissue Direct PCR Kit  (With Dye) 小鼠組織直接PCR試劑盒

10185ES50/70

50/200 T

323/983

Animal Blood Direct PCR Kit  (With Dye) 全血直接PCR試劑盒

10186ES50/70

50/200 T

323/983

                                                                                                 HB200811




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