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山梨醇ShanlichunSorbitol【檢查】有關物質取本品約0.5g,置10ml量瓶中,加水溶解并稀釋至刻度,搖勻,作為供試品溶液;精密量取2ml,置100ml量瓶中,加水稀釋至刻度,搖勻,作為對照溶液。分別取甘露醇對照品與山梨醇對照品各約0.5g,置10ml量瓶中,加水溶解并稀釋至刻度,搖勻,作為系統適用性溶液。照液相色譜法(附錄VD)測定,用磺化交聯的苯乙烯二乙烯基苯共聚物為填充劑(強陽離子鈣型交換柱,0.3m×7.8mm,8μm)(推薦美國SMA,SMA-CA(SCA3-501607
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T4 DNA聚合酶反應條件優化提高一步測序和無連接酶克隆的效率
韓國科學家MohammadNazrulIslam等先前開發了一步測序和無連接酶克?。⊿LIC)的方法,它簡單、快速并且成本低。盡管SLIC方法通常作用效果很好,但是有時候它的克隆效率很低,可能是由于T4DNA聚合酶室溫處理2.5min時導致單鏈DNA區域形成穩定的二級結構。為了克服這個問題,通過檢測較短T4DNA聚合酶在很寬溫度范圍內(25℃-75℃)的持續處理時間(5s-2.5min),韓國科學家MohammadNazrulIslam等開發了一種改進的熱調節SLIC方法。當插入的同源片段小于2 -
實驗室的廢棄物按廢棄物形態可以分為廢液、廢氣、固體廢物三類:(1)廢液:實驗室產生的廢液包括化學性實驗廢液和一般廢水;化學性實驗廢液來源主要有:多余的樣品、標準曲線、樣品分析殘液、失效的貯藏液和洗液、大量洗滌水,如各種酸堿廢液、含氟廢液、重金屬廢液等。實驗中以有機試劑作溶劑時,往往需要量很大,因此其排放量也十分可觀。一般廢水則主要來源于儀器清洗用水、實驗室的清掃用水以及大量使用的洗滌用水等等。如果不能對這些廢液進行妥善的處理,其將對周圍的環境產生極大的不良的影響,甚至會危及到其他生物和人的生命。
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盡管進行了有大量的研究,但是細胞外囊泡(EVs)的純化仍然很困難。塞爾維亞科學家BojanaMilutinovic等比較了離子交換層析法和常用的蔗糖密度梯度離心法對EVs的純化效果。差速離心之后通過離子交換層析或蔗糖密度梯度離心可以分離到正常人羊水中大量的EVs。通過電泳和凝集素印跡或者免役印跡檢測總蛋白、不同EVs標志物以及已知污染物的分布來評估分離的EVs的純度。研究結果表明,其他不同電荷分子中帶負電荷的EVs得到有效分離,通過比較分析,離子交換層析在EVs分離上的效果優于蔗糖密度梯度離心。
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宏基因組學測序的主要瓶頸是快速有效的DNA提取。我們對多種樣本類型采用了三種磁珠提取法平臺(KingFisher,epMotion,andTecan)和一種標準化離心柱法平臺進行了DNA提取效率的比較實驗,這些樣本包括糞便、口腔、皮膚、土壤和水。美國科學家ClarisseMarotz等提取重復樣本并且用16SrRNA基因擴增平行測序來評估提取差異和DNA質量。數據證明,與樣本的多樣性相比,提取方法對測序結果的任何影響很小。然而,KingFisher平臺可以在zui短的時間內產生zui大量的高質量
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單鏈寡核苷酸DNA(ssDNA)用于適配子、雜交探針和在DNA納米技術中的新型應用。目前純化ssDNA的方法要求鏈分離步驟和單獨的大小分離步驟,但是仍然可能在樣本中殘留雙鏈DNA雜質。美國科學家采用商品化的聚丙烯DNA引物來固定聚丙烯酰胺基質PCR產物中的一條鏈。電泳使非交聯DNA進入凝膠,期望大小的單鏈產物在凝膠中可以回收。結果展示了此種方法可以純化高產量的、高純度的ssDNA。原文:TulsiRamDamase,AndrewD.Ellington,andPeterB.Allen.Purifi
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注意:所有清洗工作,都必須采取嚴格的安全預防措施!1.玻璃器皿的清洗法(1)首先配制清潔劑(也叫洗液):200mg重鉻酸鉀,1000ml清水,1000ml濃硫酸(工業用)。將重鉻酸鉀先溶于水中,然后將濃硫酸逐滴加入重鉻酸鉀水溶液中去,不使硫酸濺出。配好后,盛在有玻璃塞的玻璃容器內,防止空氣氧化。洗液可重復使用直至變為藍黑色為止。(2)將待洗玻璃器皿放在肥皂水中沸浴0.5h.(3)然后用清水沖凈后放入烘箱烘干(或自然晾干)。(4)干后,浸入洗液約10min.(5)再用流水沖凈后烘干(或晾干)。(6
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移液器的維護和移液器的操作都很重要,但很少有人會對移液器進行定期的維護——沒辦法,移液器看起來太簡單了!只是移液器并不像看起來那樣簡單,并且越是的移液器,越需要定期的維護。一.外部清潔移液器的外部清潔比較簡單,主要還是一個“面子工程”——我想每個人都不希望自己手里握的的移液器臟兮兮的——所以,我建議使用者還是經常清潔一下移液器的外表面。當然,由于移液器的外殼都有一定的抗腐蝕性,所以常見的有機溶劑(如乙醇)和清潔劑(如洗潔精)都可以使用。但一定要注意兩點:其一,務*紙或布蘸取有機溶劑或清潔劑(后面