MC3T3細胞相關操作:
培養條件:
每兩天換液一次
無菌恒溫培養箱
37℃
5% CO2
PH值7.2~7.4
*培養基成分: 不含酚紅 α-MEM、10% FBS, 0.1 mg/mL L-谷氨酸鹽, and 1% 雙抗(100 U ml−1 青霉素 and 100 μg ml−1 鏈霉素),( 20 mM HEPES?)
誘導成骨細胞分化:上述+50 μg/mL 抗壞血酸and 10 (5?)mM β-磷酸甘油
細胞復蘇
1.37°C水浴預熱培養基(αMEM+10% FBS);
2.從液氮中取出細胞迅速放入37°C水浴快速解凍(解凍后不要繼續暖細胞);
3.在超凈臺中加入5ml培養基重懸細胞,1000rpm離心5min;
4.棄上清,加入5ml培養基重懸細胞后轉入T25培養瓶中,輕輕晃勻;
5.置于37°C,5% CO2培養箱中培養(培養瓶蓋沒有透氣孔的話,瓶蓋不要擰太緊);
6.第二天,用新鮮的培養基給細胞換液后繼續培養。
細胞傳代
1.當細胞融合度達到90%以上時,給細胞傳代;
2.37°C水浴預熱培養基(αMEM+10% FBS);
3.在超凈臺中,棄培養基,加入2-5mlPBS清洗細胞后,再加入1ml胰酶消化細胞;
4.顯微鏡下觀察到細胞變圓,有細胞開始脫離瓶壁時,加入5ml培養基(αMEM+10% FBS)終止消化;
5.用移液器輕輕吹下瓶壁上剩余的細胞,并輕輕吹打將細胞吹散;
6.將細胞移入離心管中,1000rpm離心5min;
7.棄上清,加入15-20ml的培養基(含血清)重懸細胞后轉入T75培養瓶中或按適當比例傳到T25瓶中(確保細胞貼壁后融合度在25-50%之間),細胞密度在1×104 cells/cm2 (2.5×105 cells/T-25瓶),混勻細胞懸液,確保細胞均勻分布;
8.將培養瓶置于37°C,5% CO2的無菌培養箱中培養。
骨髓間充質干細胞培養方法:
培養基:D-MEM(低糖)(450 mL)、10%FBS(50ml)、10mg/mL慶大霉素(250ul)、0.1 mg/mL L-谷氨酸鹽
無菌恒溫培養箱
37℃
5% CO2
1、接種細胞后,每48h更換一次培養基。每周傳代兩次,傳代時機選在分裂率為1:3或1:4時進行。通常試驗選用3-8傳代細胞。
2、細胞鑒定:
①第四傳代,去除培養基,加入3 ml of 0.25% (重量/體積) 胰蛋白酶/0.02% (重量/體積) EDTA,室溫下消化3min。沖洗細胞,加入1 ml冷PBS(4—8℃),4℃下300g離心8min,離心兩次。每個離心管中用100ul冷PBS懸浮1×106個細胞,使用抗鼠FITC標記Sca-1, CD11b and CD45抗體染色,或者是PE標記 CD29, CD31, CD34, CD44, CD86, CD105, Ia抗體染色,留一管用作對照。
②細胞在暗環境下于4℃環境中染色30min
③沖洗細胞,加入1 ml冷PBS(4—8℃),4℃下300g離心8min,離心兩次。
④為了評估細胞生活狀況,在300ul冷PBS中加入PI(0.6 µg 每百萬細胞),加入細胞中,室溫暗環境下孵育15min。
⑤采用流式細胞儀分析細胞。使用FL1、FL2發射通道。每個樣本收集201,000個事件。
3、成骨細胞分化:
①第四傳代,去除培養基,加入3 ml of 0.25% (重量/體積) 胰蛋白酶/0.02% (重量/體積) EDTA,室溫下消化3min。
②24孔每孔接種1 × 104 個細胞。培養基為α-MEM,10% (體積分數) FBS, 10 − 7 M 地塞米松, 10 mM β-甘油磷酸鈉 and 50 µM 2-磷酸抗壞血酸鹽,每孔培養基500ul。
③每周更換兩次培養基,培養2-4周,該期間細胞不傳代
④14天后,使用Alkaline Phosphatase Kit在6孔板上測定ALP活性。
⑤再培養14d。
⑥von Kossa染色評估礦化情況,每孔將培養基替換為多聚甲醛,處理30min
⑦每孔用3ml蒸餾水沖洗3min,共沖洗3遍
⑧每孔以300 µl,5%(wt/vol)硝酸銀溶液染色,在光下孵育30min
⑨每孔用3ml蒸餾水沖洗3min,共沖洗3遍
10吸凈水,每孔加入300 µl,5% (wt/vol)硫代硫酸鈉溶液,處理5min
11每孔用3ml蒸餾水沖洗3min,共沖洗3
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