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說明：考馬斯亮蘭法（Bradford 法），是目前靈敏度zui高的蛋白質測定法之一。考馬斯亮蘭
G-250 染料，在酸性溶液中與蛋白質結合，使染料的zui大吸收峰由 465nm 變為 595nm，溶
液的顏色也由棕黑色變為蘭色。在595nm 下測定的吸光度值A595，與蛋白質濃度成正比。
包裝：
考馬斯亮蘭溶液 300 毫升
蛋白標準（BSA ） 10 毫升（1mg/ml）
產品說明書 1 份
保存： 2℃-8 ℃ （BSA 蛋白標準-20℃）
實驗步驟
1. 從冰箱取出考馬斯亮蘭溶液，平衡至室溫并混勻；預熱分光光度計20 分鐘或酶標儀。
2. 以分光光度計測;準備九支管，分別編號，按下列順序加樣。
編號 1 2 3 4 8 6 7 8 9
去離子水μl 100 90 80 60 40 20 0
蛋白標準μl 0 10 20 40 60 80 100
樣品μl 100 100
考馬斯亮蘭溶液ml 3 3 3 3 3 3 3 3 3
混勻、，2~5分鐘后，以第1 號試管為空白對照595nm，測定各樣品收值A595，樣品管8、
9 取平均值
相當濃度mg/ml 0 0.1 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0
注：樣品和試劑比可以按比例放大或縮小。
微孔檢測時，可以按比例縮小，但總體積不小于100ul。
性能指標：
在20～1200ug/ml 有著比較好的線性。當吸光度大于0.8A 時，請把樣本稀釋后再做。
注意：
1.使用塑料或玻璃比色皿。如使用石英比色皿，使用后立即用少量95%的乙醇蕩洗，以
洗去染色用完后
可以乙醇反復清洗。塑料比色皿決不可用乙醇或丙酮長時間浸泡。
2.本方法標準曲線有輕微的非線性，因而不能用Beer 定律進行計算，而只能用標準曲線來
測定
3.比色順序從蛋白濃度低的管開始，中間不必清洗比色杯，以免影響結果。
4.疏水蛋白或粘蛋白，可能與染料發生沉淀，加入等體積1N NaOH 可以消除。
5.如果知道樣品的蛋白大體濃度，可以采用相近的3 管做標準曲線。
6. 由于各種蛋白質中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同，因此Bradford 法用于不同蛋白
質測定時有較大的
偏差，在制作 標準曲線時通常選用 g—球蛋白為標準蛋白質，以減少這方面的偏差。
7. 有一些物質干擾此法的測定，主要的干擾物質有：去污劑、 Triton X-100 、十二烷基硫
酸鈉（SDS ）和 0.1N
的NaOH。（如同0.1N 的酸干擾Lowary 法一樣）。
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