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什么是熒光定量PCR?

來源:北京固望生物科技有限公司   2024年12月04日 19:05  

實時熒光定量PCR(Real-time qPCR)是指在PCR反應中加入熒光基團,通過連續(xù)監(jiān)測熒光信號出現的先后順序以及信號強弱的變化,即時分析目的基因的初始量的一種PCR技術。


一、熒光化學物質


Real-time qPCR所使用熒光化學物質有熒光染料和熒光探針兩類。


1、熒光染料


目前主要使用的熒光染料是SYBR Green I,SYBR Green I是一種嵌入型花箐染料,在488nm(藍光)照射激發(fā)后,在522nm(綠光)具有發(fā)射高峰。


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SYBR Green I是嵌在DNA螺旋的小溝里面的,一般用來染雙鏈DNA,在游離狀態(tài)下,SYBR Green I發(fā)出微弱的熒光,但一旦與雙鏈DNA結合后,熒光大大增強。因此,SYBR Green I的熒光信號強度與雙鏈DNA的數量相關,可以根據熒光信號檢測出PCR體系存在的雙鏈DNA數量。


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YBR Green I 與雙鏈DNA的親和力非常高,對分子生物學中常用的酶(如:Taq 酶、逆轉錄酶、內切酶、T4連接酶等)沒有抑制作用。

SYBR染料-DNA復合物在非極性溶液中可解離,可用乙醇沉淀的方法將SYBR Green I 從DNA中去除。SYBR Green I能夠被玻璃表面強烈吸收,染料溶液應該在塑料容器中配制。

SYBR Green I 染料法即將SYBR Green I染料添加到PCR反應體系中時,SYBR Green I能夠結合到模板和擴增產物發(fā)出熒光;隨著每輪擴增,產物量呈指數型上升,熒光信號也隨之累積并被儀器檢測到。


2、熒光探針


Real-time qPCR中常用的熒光探針為TaqMan探針,其基本原理是依據目的基因設計合成一個能夠與之特異性雜交的FRET探針,該探針的5'端標記熒光基團,3'端標記淬滅基團。正常情況下兩個基團的空間距離很近,熒光基團發(fā)射的熒光信號被淬滅基團吸收而不能發(fā)出熒光;PCR擴增時,引物與該探針同時結合到模板上,探針的結合位置位于上下游引物之間;當擴增延伸到探針結合的位置時,PCR酶利用5'→3'外切酶活性將探針酶切降解,使熒光基團和淬滅基團分離,從而使其發(fā)出熒光。


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熒光信號被熒光監(jiān)測系統(tǒng)接收,檢測到的熒光分子數與PCR產物的數量成正比,因此,根據PCR反應體系中的熒光強度即可計算出初始DNA模板的數量。


1)熒光共振能量轉移FRET


熒光共振能量轉移是指在兩個不同的熒光基團中,如果一個熒光基團(供體 Donor)的發(fā)射光譜與另一個基團(受體 Acceptor)的吸收光譜有一定的重疊,當這兩個熒光基團間的距離臨近至一定范圍時(一般小于100?/10nm),就可觀察到熒光能量由供體向受體轉移的現象,即以前一種熒光基團的激發(fā)波長激發(fā)時,可觀察到后一個基團發(fā)射的熒光。


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簡單地說,就是在供體基團吸收一定頻率的光子后第一電子發(fā)生能級躍遷被激發(fā)到更高的電子能態(tài),在該電子回到基態(tài)前,通過偶極子相互作用,實現了能量向鄰近的受體分子轉移的過程。


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此過程沒有光子的參與,所以是非輻射的,供體分子被激發(fā)后,當受體分子與供體分子相距一定距離,且供體和受體的基態(tài)及第一電子激發(fā)態(tài)兩者的振動能級間的能量差相互適應時(同一振蕩頻率),處于激發(fā)態(tài)的供體將把一部分或全部能量轉移給受體,使受體被激發(fā),在整個能量轉移過程中,不涉及光子的發(fā)射和重新吸收。如果受體熒光量子產率為零,則發(fā)生能量轉移熒光熄滅;如果受體也是一種熒光發(fā)射體,則呈現出受體的熒光,并造成次級熒光光譜的紅移。




①FRET發(fā)生條件:


a.供體分子的發(fā)射光譜應與受體分子的激發(fā)光譜必須有顯著重疊(>30%)。


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b.供體分子與受體分子的作用距離必須在1-10nm之間,基團間的FRET效率可由E=1/[1+(R/R0)?]反映(R表示基團分子之間的距離;R0表示E=50%時供體和受體分子間的距離,依賴熒光基團發(fā)射譜和淬滅基團激發(fā)譜的重疊程度以及基團能量轉移的偶極子的相對方位,對于特定的供體受體對是常數)。


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FRET程度與基團之間的空間距離緊密相關,隨著距離延長,FRET呈顯著減弱。



c.供體分子的發(fā)射態(tài)偶極矩與受體分子的吸收態(tài)偶極矩、以及它們的向量必須滿足一定的條件。


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②FRET的應用



a.檢測分子間相互作用:


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b.檢測分子的折疊與構像變化:
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2)TaqMan探針

①設計原則:

a.長度:建議15-30bp,以保證結合特異性;擴增子長度應小于150 bp。



b.Tm值:68-72℃,高于引物8-10℃,可保證探針在退火時先于引物與目的片段結合,也確保探針與模板結合的穩(wěn)定性大于引物與模板結合的穩(wěn)定性,最好富含GC。

c.5'端/3'端:探針5'端避免為G,G堿基一定程度上對5'端熒光有淬滅作用,避免報告基團的熒光在探針切割后發(fā)生淬滅;3'端需進行封閉,以防止在PCR中起引物的作用進行延伸,TAMRA等基團本身可進行封閉。

d.堿基分布:GC含量在30%~80%之間,一條探針中,C含量多于G,G含量高會降低反應效率,這時可選擇互補的另一條鏈作為探針,避免單個核苷酸成串,如GGGGG。

e.結合位置:探針退火時,應盡可能接近上游引物,同時又不重疊,離上游引物的3'端至少相差一個堿基;如果Taqman探針是用于檢測等位基因或突變位點,則應將錯配核苷酸放在探針中間,不能放在末端。

e.純化方式:建議選擇HPLC純化。

②保存:TaqMan探針必須避光保存,避免熒光基團降解。


3)TaqMan探針法優(yōu)點

①特異性強:

探針法qPCR要達到檢測的目的,不僅要上下游引物要跟模板匹配,還需要探針與模板匹配,提升了檢測的特異性。另外一方面,對于模板同源性比較高的不同目的基因的檢測和鑒定,在擴增引物特異性沒法保證的情況下,可通過設計探針的特異性來達到特異性檢測的目的。而且特異性的探針比特異性的引物對模板序列的特異性要求要低,只要模板有幾個堿基甚至1個堿基的差異就能設計特異性的探針,而這對于擴增引物是無法實現的。

②準確性、靈敏度高:

從探針法qPCR原理來看,擴增引物和探針序列都匹配后擴增的產物才能產生熒光信號,這樣就確保了熒光信號是目的片段的擴增產生的,排除了非特異性擴增的影響,從而保證了檢測的準確性。特別是針對一些低拷貝和低濃度的樣品,染料法qPCR隨著循環(huán)數的增加容易出現引物二聚體的信號干擾,導致檢測結果不準,而這種情況在探針法qPCR上不存在,因為即使出現引物二聚體,由于其不是目的片段,沒有探針結合位點,所以也不會產生熒光信號。這也體現了探針法qPCR檢測低拷貝樣品的高準確性和高靈敏度。

③可進行多重檢測:

在探針的5'端標記不同的熒光修飾,則不同的探針在檢測過程中就會發(fā)出不同的熒光信號。根據此原理,可以將檢測不同目的基因或者基因型的探針標記不同的熒光修飾,用做混合檢測,這樣就可以做多重檢測,檢測對應的熒光信號就是檢測對應探針的熒光定量結果,多重檢測大大節(jié)省檢測成本和檢測時間,進一步提高了檢測的速度和適用性。


二、定量原理


理想的PCR反應:X=X?*2?;實際的PCR反應:X=X?*(1+Ex)?(n:擴增反應的循環(huán)次數,X:第n次循環(huán)后的產物量,X?:初始模板量,Ex:擴增效率);在擴增產物達到閾值線時:XCt=X?*(1+Ex)??=S (XCt:熒光擴增信號達到閾值強度時擴增產物的量,在閾值線設定以后,它是一個常數,設為S);方程式兩邊同時取對數得: lgS=lg[X?*(1+Ex)??],整理方程式得: lgX?=-lg(1+Ex) ??+lgS。


結論:


①模板DNA量越多,達到熒光閾值的循環(huán)數越少,即Ct值越小。


②lg濃度與循環(huán)數呈線性關系。


a. 根據樣品擴增達到閾值的循環(huán)數(Ct值)即可計算出樣品中所含的模板量。(相對定量)


b. 通過已知起始拷貝數的標準品可作出標準曲線,根據樣品Ct值,即可計算出樣品中所含的模板量。(絕對定量)


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