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雞小腸上皮細胞永生化細胞構建方法及SV40基因檢測結果

來源:鏡像綺點(上海)細胞技術有限公司   2024年11月01日 16:20  

1.試驗所需儀器設備及試劑

(1)儀器

儀器名稱

規格型號

生物安全柜

BSC-1500ⅡA2-X

CO2細胞培養箱

BC-J160S

熒光倒置顯微鏡

DS-Ri2

高速冷凍離心機

Multifuge X1R

電熱恒溫鼓風干燥箱

DHG-9123A

電熱恒溫震蕩水槽

DK-2B


(2)試劑耗材

試劑名稱

規格/貨號

T25細胞培養瓶

430639

血球計數板

Neubauer improved

24孔板專用細胞爬片

YA0350

細胞培養孔板

WHB-24

胎牛血清

1414426

上皮細胞專用培養基

Primed-iCell-001

多聚甲醛(PFA)

P1110

DAPI

C0060

Triton X-100

T8200

山羊血清

SL038

ck19

10712-1-AP

Alexa Fluor 488 - conjugated Affinipure Goat Anti-Rabbit IgG(H+L)

SA00006-2

Fluoromount-G熒光封片劑

0100-01

2.雞小腸上皮細胞的分離培養

去孵化9day的雞蛋,蛋殼表面用酒精棉球消毒。

敲開蛋殼,將雞胚固定于無菌操作板上,取出小腸,置于含抗生素的PBS緩沖液中清洗數次。

將腸管剪成小于1mm3的碎片,轉移至50mL的離心管中,加入無血清基礎培養基清洗,用移液管反復吹打,1200r/min離心4min。

按上述步驟反復清洗組織塊4~5次,直至上清液澄清。

將組織塊均勻接種于基質膠包被的T25細胞培養瓶中,加入1mL上皮細胞wan全培養基,將培養瓶倒置于37℃,5%CO2,飽和濕度的培養箱中靜置1小時。

翻轉培養瓶使其正置,可見培養液浸潤組織。

置于培養箱中繼續培養,次日顯微鏡下觀察并換液。

后續每天觀察,2~3day換液,期間去掉飄起的組織塊,直至細胞長滿整個瓶底。

細胞培養圖片如下:

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原圖見文件-細胞培養

3.免疫熒光鑒定

3.1實驗步驟

(1)細胞爬片

取3片玻璃片于24孔板中,每孔加入培養基1mL,加入細胞0.02million個/孔。置培養箱2h或過夜。

(2)固定

細胞爬片后,吸出培養基,用PBS洗1遍,加入4% PFA于4℃固定30min。用PBS洗3×5min/次。也可最后一次不吸出PBS,放4℃過夜。

(3)破膜封閉

將玻片除去水分,置于培養皿支撐物上,

玻璃片封閉液配置:0.5% Trition X-100與PBS 1:1混合,再加10% 血清,

取50uL破膜封閉液滴于防水膜上,將玻片上有細胞的一面蓋上2h。

(4)一抗孵育

一抗配制:抗體與PBS 1:100(200)稀釋

破膜封閉后,取50uL一抗于防水膜上(濕盒中),將玻片(有細胞的一面)蓋上置于4℃(最多可放置一周)

(5)二抗孵育

室溫避光孵育二抗(二抗:PBS=1:500)2h后,PBS洗3×5min/次,染DAPI(DAPI:PBS=1:1000)5min,PBS洗3×5min/次。

(6)包埋

玻片上各滴1滴Fluoromount-G,將有細胞的一面蓋上。

鑒定細胞為P1代細胞

3.2免疫熒光鑒定結果

           100X-DAPI                                  100X-fluorescence

            200X-DAPI                                 200X-fluorescence

原圖見文件-免疫熒光

4.轉染

4.1SV40過表達慢病毒基本信息

雞小腸上皮細胞永生化細胞構建方法及SV40基因檢測結果

4.2轉染

(1)將細胞接種6孔板,每孔細胞數約為1×105 個,

(2)第二天,待細胞貼壁后,換液,

(3)加入1mLwan全培養基,再加20 μL SV40過表達慢病毒,

(4)混勻后繼續培養,

(5)12h后觀察細胞狀態,并更換為新鮮培養基,

(6)當細胞長滿板底后,傳代至T25培養瓶中。

細胞轉染圖片如下:

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原圖見文件-轉染

5.篩選

5.1殺滅曲線的確定

(1)將未轉染的細胞按每孔0.05million鋪入24孔板,孵育過夜,

(2)第二天,除去24孔板中舊的培養基,

(3)將含不同濃度嘌呤霉素(1ug/mL,2ug/mL,3ug/mL,4ug/mL,5 ug/mL,6ug/mL,7ug/mL)的新鮮培養基加入已鋪有細胞的24孔板,

(4)每2天更換新鮮的篩選培養基,

(5)每天觀察細胞的存活比例,

(6)最小的嘌呤霉素使用濃度就是從嘌呤霉素篩選開始1-4d內殺死所有細胞的zui低篩選濃度。

結果:嘌呤霉素的使用濃度為1ug/mL,作用時間2d。

5.2嘌呤霉素篩選轉染細胞

(1)第一天,將轉染的細胞按每孔0.05million鋪入24孔板,孵育過夜

(2)第二天,除去24孔板中舊的培養基,

(3)加入含嘌呤霉素(1ug/mL)的篩選培養基,孵育,

(4)每2天更換新鮮的篩選培養基,

(5)每天觀察細胞的存活比例,

(6)在同一時間點(2d)存活的細胞,即為轉染成功的細胞,

(7)對篩選后的細胞進行擴增。

6.細胞擴增

將篩選后的細胞進行擴增,篩選后的細胞為P1代,擴增至少到12代。

永生化的細胞圖片如下:

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原圖見文件-永生化

雞小腸上皮細胞永生化細胞Realtime-PCR檢測SV40基因

雞小腸上皮細胞永生化細胞構建方法及SV40基因檢測結果

                                                                                                                        圖1 擴增曲線

                                                                                 Sample 1為原代雞小腸上皮細胞;Sample 2為永生化雞小腸上皮細胞

雞小腸上皮細胞永生化細胞構建方法及SV40基因檢測結果

                                                                                                                                圖2 融解曲線

                                                                                         Sample 1為原代雞小腸上皮細胞;Sample 2為永生化雞小腸上皮細胞

雞小腸上皮細胞永生化細胞構建方法及SV40基因檢測結果

                                                                                                          圖3  SV40基因表達

                                                                      Sample 1為原代雞小腸上皮細胞;Sample 2為永生化雞小腸上皮細胞

                                                             表1  各孔Ct值及Tm值

                            Sample 1為原代雞小腸上皮細胞;Sample 2為永生化雞小腸上皮細胞


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