乳酸含量(LA)檢測試劑盒(可見分光光度法)
產品貨號:BA1258
產品規格:50管/24樣
產品簡介:
乳酸是生物體代謝過程中重要的中間產物,與糖代謝、脂類代謝、蛋白質代謝及細胞內能量代謝密切相關,乳酸含量是評估糖元代謝的和有氧代謝的重要指標。乳酸在乳酸脫氫酶的作用下生成丙酮酸,同時使NAD+還原生成NADH和H+,H+傳遞給PMS生成的PMSH2還原MTT生成紫色物質,在570nm處有特征吸收峰。
技術指標:
最di檢出限:0.0387μmol/mL
線性范圍:0.039-1μmol/mL
注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者 增加樣本量進行檢測。
產品組成:
試劑名稱 | 規格 | 保存條件 |
提取液一 | 液體30mL×1瓶 | 4℃ |
提取液二 | 液體4mL×1瓶 | 4℃ |
試劑一 | 液體20mL×1瓶 | 4℃ |
試劑二 | 液體60μL×1瓶 | 4℃ |
試劑三 | 粉劑×1瓶 | -20℃ |
試劑四 | 粉劑×1瓶 | 4℃ |
試劑五 | 粉劑×1瓶 | -20℃ |
試劑六 | 液體5mL×1瓶 | 4℃ |
標準品 | 粉劑×1支 | 4℃ |
溶液的配制:
1. 試劑二:液體置于試劑瓶內EP管中。臨用前按試劑二(V):蒸餾水(V)=10μL:450μL的比例配制試劑二溶液,現用現配;
2. 試劑三:臨用前加入12mL蒸餾水充分溶解,可分裝后-20℃保存,避免反復凍融,-20℃保存一周;
3. 試劑四:臨用前加12mL蒸餾水充分溶解,4℃保存一周;
4. 試劑五:臨用前每瓶加入8mL蒸餾水混勻,可分裝后-20℃保存,避免反復凍融,-20℃保存一周;
5. 標準品:臨用前加入1.04mL蒸餾水配成100μmol/mL的標準溶液;
6. 顯色液的配制:臨用前根據用量按照試劑三(V):試劑四(V)=1:1的比例充分混勻,現配現用。
需自備的儀器和用品:
天平、研缽/勻漿器、離心機、可見分光光度計、1mL玻璃比色皿、恒溫水浴鍋、乙醇和蒸餾水。
操作步驟:
一、樣本處理(可適當調整待測樣本量,具體比例可以參考文獻)
1. 組織:按照質量(g):提取液一體積(mL)為1:5~10的比例(建議稱取約0.1g,加入1mL提取液一)加入提取液一,冰浴勻漿后于4℃,12000g離心10min,取0.8mL上清液,再加入0.15mL提取液二,4℃12000g離心10min后取上清待測。
2. 細胞:按照細胞數量(104個):提取液一體積(mL)為500~1000:1的比例(建議500萬細胞加入1mL提取液一),冰浴超聲波破碎細胞(功率300w,超聲3秒,間隔7秒,總時間3min);于4℃,12000g離心10min,取0.8mL上清液,再加入0.15mL提取液二,4℃12000g離心10min后取上清待測。
3. 血清(漿):取100μL血清(漿)加入1mL提取液一,4℃,12000g離心10min,取0.8mL上清液,再加入0.15mL提取液二,12000g離心10min后取上清待測。
二、測定步驟
1. 分光光度計預熱30min以上,波長調至570nm,乙醇調零。
2. 標準液的稀釋:將100μmol/mL的標準溶液用蒸餾水稀釋為1、0.625、0.3125、0.15625、0.078、0.039μmol/mL的標準溶液待測。
3. 加樣表:
測定管 | 對照管 | 標準管 | 空白管 | |
樣本(μL) | 50 | 50 | - | - |
標準品(μL) | - | - | 50 | - |
蒸餾水(μL) | - | 10 | - | 50 |
試劑一(μL) | 200 | 200 | 200 | 200 |
試劑二(μL) | 50 | - | 50 | 50 |
試劑五(μL) | 100 | 100 | 100 | 100 |
在EP管中充分混勻,于37℃水浴準確反應20min。 | ||||
試劑六(μL) | 30 | 30 | 30 | 30 |
顯色液(μL) | 300 | 300 | 300 | 300 |
37℃避光反應20min后于25℃,10000rpm離心10min,去上清,留沉淀。 | ||||
乙醇(μL) | 1000 | 1000 | 1000 | 1000 |
充分溶解沉淀后,于570nm處測定吸光值,分別記為A測定管,A對照管,A標準管,A空白管,計算ΔA測定=A測定管-A對照管;ΔA標準= A標準管-A空白管。 |
三、乳酸含量的計算
1. 標準曲線的繪制
以各標準溶液濃度為x軸,以其對應的吸光值(ΔA標準)為y軸,繪制標準曲線,得到標準方程y=kx+b,將ΔA測定帶入公式中得到x(μmol/mL)。
2. 乳酸含量計算
(1)按照蛋白含量計算
LA含量(μmol/mg prot)=x×V樣本÷(V樣本×Cpr)=x÷Cpr
(2)按照樣本質量計算
LA含量(μmol/g質量)=x×(V上清+V提取液二)÷(W×V上清÷V提取液一)=1.1875×x÷W
(3)按照細胞數量計算
LA含量(μmol/106 cell)=x×(V上清+V提取液二)÷(5×V上清÷V提取液一)=0.2375×x
(4)按照液體體積計算
LA含量(μmol/mL)=x×(V上清+V提取液二)÷ [V液體×V上清÷(V提取液一+V液體)]=13.0625×x
V樣本:加入的樣本體積,0.05mL;W:樣本質量,g;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL,蛋白濃度需自行測 定;V上清:提取時上清液體積,0.8mL;V提取液二:加入的提取液二體積,0.15mL;V提取液一:加入的提取液一體積,1mL;5:細胞數量,5×106個;V液體:液體樣本體積,0.1mL。
注意事項:
如果測定吸光值超過線性范圍吸光值,可以增加樣本量或者稀釋樣本后再進行測定。
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