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如何減少ELISA試劑盒實驗中背景因素的影響?

來源:上海哈靈生物科技有限公司   2018年04月24日 11:56  

ELISA試劑盒實驗的原理似乎很簡單,不外乎固定抗原,添加一抗、二抗和底物,間中夾雜著

洗滌和封閉。然而,即使是平淡無奇的洗滌和封閉,如果做得不太好,也有可能毀了整個實驗

。在實驗結束時,我們是否能獲得有意義的信息,這在很大程度上取決于結果的信噪比。背景

噪音會影響您對結果的判斷。如何降低ELISA的背景,下面有一些tips。

洗滌很重要

洗滌步驟看似很無聊,其實很重要,因為如果未結合的材料(如非特異結合的抗體或檢測試劑)

殘留在微孔板中,那么它會增加背景噪音。如有必要,可增加洗滌液中的鹽濃度,這會阻止非

特異結合反應。如果背景過高,而您懷疑洗滌不夠時,可以嘗試增加洗滌次數。

封閉更關鍵

封閉液的作用是讓不相關的蛋白占據微孔板中潛在的結合位點。這就降低了可產生信號的抗體

非特異結合的機會。您當然也希望抗體只與目的蛋白結合吧。如果您的背景過高,懷疑封閉不

充分,那么您可以嘗試使用更高濃度的封閉液,或適當延長封閉時間。

如果您一直被背景問題所困擾,那么也許您該花些時間來優化封閉液。這可能需要時間,但也

是值得的。目前主要有兩種類型的封閉液:蛋白和非離子型去污劑。您使用的類型須取決于多

個因素,包括微孔板的表面試劑、吸附的抗原、您的抗體和檢測試劑。好的封閉液應降低非特

異性結合,但它不應當與抗原、抗體或檢測試劑發生相互作用。

常用的非離子型去污劑是Tween-20。這種封閉液便宜、穩定,在去除洗滌過程中的一些非特

異結合上很有用。但它們只在存在時起作用,因為很容易被洗掉。因此所有洗滌液中也必須添

加封閉液。請勿使用高濃度(正常濃度為0.01-0.1%),它會降低特異結合,產生假陰性。另一

個選擇是使用蛋白和非離子型去污劑這兩種封閉液,后者可協助洗滌過程中的封閉。

蛋白封閉液則有所不同,是*的。它們與開放位點結合并封閉,同時穩定與微孔板結合的抗

原分子。常用的蛋白封閉液包括牛血清白蛋白(BSA)、脫脂奶粉、正常血清和魚明膠。血清組

分的內在多樣性可使它有效攔截許多不同類型的分子相互作用。不過,它的缺點在于能與

Protein A和IgG抗體相互作用。解決這個問題的一種方法是使用雞或魚的正常血清。

抗體濃度須優化

我們通常會follow師兄師姐留下來的操作步驟,但是如果試劑稍有不同,則可能需要優化抗體

的量。記住,非特異的抗體結合會增加背景。為了防止這一點,切勿使用過多的一抗或二抗。

檢測試劑要適量

另一點也很顯而易見:切勿使用過多的檢測試劑。如果濃度過高,或者未正確稀釋,則會導致

高背景。也不要顯色過度,如有必要,優化一下何時應加入終止液。

    如果您的ELISA不幸地遇到了高背景,那么也無需太擔心,依次查看ELISA系統中的組分,

并排除可能存在的問題。悉心優化,相信很快就會有漂亮的結果。

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