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組織培養技術

閱讀:1278        發布時間:2022/3/17
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       組織培養技術是在人為創造的無菌條件下將生物的離體器官(如根、莖、葉、莖段、原生質體)、組織或細胞置于培養基內,并放在適宜的環境中,進行連續培養以獲得細胞、組織或個體的技術。這種技術已廣泛應用于農業和生物、醫藥的研究。

       體內組織細胞在體外培養時,所需培養環境基本相似,但由于物種、個體遺傳背 景及所處發育階段等的不同,各自要求條件有一定差別,所采取的培養技術措施 亦不盡相同,現介紹主要組織細胞培養的要點如下:

       上皮細胞包括腺上皮是很多器官如肝、胰、乳腺等的功能成分,又由于癌起源于上皮組織,故上皮細胞培養特別受到重視。但上皮細胞培養中常混雜有成纖維細胞,培養時生長速度往往超過上皮細胞,并難以純化,同時上皮細胞難以在體外長期生存,因此純化和延長生存時間是培養關鍵。體內上皮細胞生長在膠原構成的基膜, 因此培養在有膠原的底物上可能利于生長, 另外人或小鼠表皮細胞培養在以 3T3 細胞為飼養層(用射線照射后)時,細胞易生長并可發生一定程度的分化現象。降低 PH、Ca2+含量和溫度,向培養基中加入表皮生長因子,均有利于表皮細胞生長。以表皮細胞為例,用皮膚表皮和真皮分離培養法可獲得純上皮細胞,

       內皮細胞易于從大血管分離培養成單層細胞,對于研究內皮細胞再生、腫瘤促血管生長因子(TAF)等有很大價值。       研究人內皮細胞培養以人臍帶靜脈灌流消化法尤為簡便,其法如下:

       1、產后新鮮臍帶,無菌剪取 10—15 厘米長一段,如不能立即培養,可于12小時內保存于 4℃。

       2、用三通注射器吸取溫 PBS 液注入臍靜脈中洗去殘血,在入口處用線繩扎緊, 以防液體返流。

       3、用血管鉗夾緊臍帶一端,從另一端向臍靜脈中徐徐注入濃度為 0.1%的粗制膠原酶,充滿血管,消化 3—10 分鐘;注入口用線繩扎,以防液體返流。

       4、吸出含有內皮細胞的消化液,于離心管中,注入溫PBS 輕輕反復沖洗后,一并注入離心管中(此步驟可重復) 。

       5、離心去上清,加入RPMI1640培養液制成細胞懸液,接種入培養器皿中,置溫箱培養。兩至三天可見細胞長成單層。

       神經細胞(神經元)不易培養,只有在適宜情況下,如接種在膠原底層上,或加入神經生長因子和膠質細胞因子時,可出現一定程度的分化,長出突起等現象, 但很難使之增殖。而神經膠質細胞是神經組織中比較容易培養的成分。人、鼠等腦組織即可用于神經膠質細胞培養,不僅能獲得生長的膠質細胞,也可形成能傳代的二倍體細胞系。一般說來,膠質細胞在培養中生長不穩定,不易自發轉化,但對外界因素仍保持很好的敏感性,可用 ROUS病毒和SV4等誘發轉化。

       一.設備:無菌操作設備。

       二.大型設備

CO2培養箱:恒溫5%、10%CO2維持培養液中pH值。        

倒置顯微鏡:用于每天觀察貼壁細胞生長情況。

解剖顯微鏡:用于準確地取材。

常溫冰箱:-4℃,用于保存各種培養液,解剖液和鼠尾膠。

低溫冰箱:-20℃--80℃,用于儲存血清酶,貴重物品和試劑。

電熱干烤箱:用于消毒玻璃器皿。高壓消毒鍋:用于消毒培養皿,手術器械。

過濾器:配制解剖液、培養液,必須過濾后才可使用,以去除細菌。

滲透壓儀:pH劑,天平等。

       三.培養器皿及手術器械

1.培養皿:常用35mm塑料及玻璃皿,解剖取材用15mm-90mm直徑。

2.培養板:24-40孔,可用于開放培養。

3.培養瓶;

4.吸管:常用1,5,10mL,均需泡酸、洗滌、滅菌后方可使用。

5.各類培養液貯存器。

6.小型手術器械。

       準備

       一.配制培養液

(1)解剖液:以無機鹽(去除Ca2+, Mg2+ )加葡萄糖配制成PBS緩沖液,保持一定的滲透壓和pH值。

(2)基礎培養基(MEM):主要為多種氨基酸,加入葡萄糖,雙蒸餾水溶解。

(3)接種培養液:用于胰酶消化后的細胞分散,做成細胞懸液,其成分為MEM含1%谷氨酰胺,另加入10%馬血清,當天配制。

(4)維持培養液:接種后24h,全部換成此液,后每2周換一次,每次換1/2。其成分為MEM中含5%馬血清,1%谷氨酰胺,及適量的支持性營養物質。

       二.培養基質

常用鼠尾膠、小牛皮膠,多聚賴氨酸,再涂膠。

       三.消毒培養皿的備用

所有培養器皿均需清水沖洗2-3d,達兩次ddH2O,每遍洗刷3-4次,加塞包裝,置于烤箱中干燥消毒,于培養前1天進行。

       神經細胞分散培養

       (一)選材

       常用胚胎動物或新生鼠神經組織。雞胚常用胚齡6-8d,新生鼠或胎鼠(12-14d)或人胚胎。不過也有認為與組織相關。如大白鼠胚胎以19d為宜,小鼠以18d為宜,大鼠紋狀體以10d為宜;若紋狀體與黑質聯合培養的大鼠胚,則黑質以13d,紋狀體18-21d為宜;小腦以20-21d小鼠胚胎,所獲蒲氏細胞成活率高,顆粒細胞正在分化;脊髓與DRG聯合培養,常用4-7d雞胚或12-14d小鼠胚胎,取材易,神經成活率高。

       (二)取材

       腦則取出相應組織,在解剖液中先剪碎,以使胰酶消化。脊髓則固定于瓊脂板上,用小刀將其要成背腹兩側,分別培養。

       (三)細胞分離與接種

       神經組織用0.125-0.25%胰蛋白酶在37℃孵育30min,移入接種液,停止消化,并洗去胰蛋白酶液,用細口吸管吹打細胞懸液,使其充分分散,如此多次,待沉淀后吸出上層細胞懸液,計數,預置細胞密度,接種于培養皿(1×106),做電生理應為5×105或更低。

       (四)抑制膠質細胞生長

培養3-5d后,也有人認為培養7d后,用阿糖胞苷,或5-FU抑制神經膠質細胞的生長

 

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