組織培養技術
組織培養技術是在人為創造的無菌條件下將生物的離體器官(如根、莖、葉、莖段、原生質體)、組織或細胞置于培養基內,并放在適宜的環境中,進行連續培養以獲得細胞、組織或個體的技術。這種技術已廣泛應用于農業和生物、醫藥的研究。
體內組織細胞在體外培養時,所需培養環境基本相似,但由于物種、個體遺傳背 景及所處發育階段等的不同,各自要求條件有一定差別,所采取的培養技術措施 亦不盡相同,現介紹主要組織細胞培養的要點如下:
上皮細胞包括腺上皮是很多器官如肝、胰、乳腺等的功能成分,又由于癌起源于上皮組織
內皮細胞
1、產后新鮮臍帶,無菌剪取 10—15 厘米長一段,如不能立即培養,可于12小時內保存于 4℃。
2、用三通注射器吸取溫 PBS 液注入臍靜脈中洗去殘血,在入口處用線繩扎緊, 以防液體返流。
3、用血管鉗夾緊臍帶一端,從另一端向臍靜脈中徐徐注入濃度為 0.1%的粗制膠原酶,充滿血管,消化 3—10 分鐘;注入口用線繩扎,以防液體返流。
4、吸出含有內皮細胞的消化液,于離心管
5、離心去上清,加入RPMI1640培養液制成細胞懸液,接種入培養器皿中,置溫箱培養。兩至三天可見細胞長成單層。
神經細胞(神經元)不易培養,只有在適宜情況下,如接種在膠原底層上,或加入神經生長因子和膠質細胞因子
一.設備:無菌操作設備。
二.大型設備
CO2培養箱:恒溫5%、10%CO2維持培養液中pH值。
倒置顯微鏡:用于每天觀察貼壁細胞
解剖顯微鏡:用于準確地取材。
常溫冰箱:-4℃,用于保存各種培養液,解剖液和鼠尾膠。
低溫冰箱:-20℃--80℃,用于儲存血清酶,貴重物品和試劑。
電熱干烤箱:用于消毒玻璃器皿。高壓消毒鍋:用于消毒培養皿,手術器械。
過濾器:配制解剖液、培養液,必須過濾后才可使用,以去除細菌。
滲透壓儀:pH劑,天平等。
三.培養器皿及手術器械
1.培養皿:常用35mm塑料及玻璃皿,解剖取材用15mm-90mm直徑。
2.培養板:24-40孔,可用于開放培養。
3.培養瓶;
4.吸管:常用1,5,10mL,均需泡酸、洗滌、滅菌后方可使用。
5.各類培養液貯存器。
6.小型手術器械。
準備
一.配制培養液
(1)解剖液:以無機鹽(去除Ca2+, Mg2+ )加葡萄糖配制成PBS緩沖液,保持一定的滲透壓和pH值。
(2)基礎培養基(MEM):主要為多種氨基酸,加入葡萄糖,雙蒸餾水溶解。
(3)接種培養液:用于胰酶消化后的細胞分散,做成細胞懸液
(4)維持培養液:接種后24h,全部換成此液,后每2周換一次,每次換1/2。其成分為MEM中含5%馬血清,1%谷氨酰胺,及適量的支持性營養物質。
二.培養基質
常用鼠尾膠、小牛皮膠,多聚賴氨酸,再涂膠。
三.消毒培養皿的備用
所有培養器皿均需清水沖洗2-3d,達兩次ddH2O,每遍洗刷3-4次,加塞包裝,置于烤箱中干燥消毒,于培養前1天進行。
神經細胞分散培養
(一)選材
常用胚胎動物或新生鼠神經組織。雞胚常用胚齡6-8d,新生鼠或胎鼠(12-14d)或人胚胎。不過也有認為與組織相關。如大白鼠胚胎以19d為宜,小鼠以18d為宜,大鼠紋狀體以10d為宜;若紋狀體與黑質聯合培養的大鼠胚,則黑質以13d,紋狀體18-21d為宜;小腦以20-21d小鼠胚胎,所獲蒲氏細胞成活率高,顆粒細胞
(二)取材
腦則取出相應組織,在解剖液中先剪碎,以使胰酶消化。脊髓則固定于瓊脂板上,用小刀將其要成背腹兩側,分別培養。
(三)細胞分離與接種
神經組織用0.125-0.25%胰蛋白酶在37℃孵育30min,移入接種液,停止消化,并洗去胰蛋白酶液,用細口吸管吹打細胞懸液,使其充分分散,如此多次,待沉淀后吸出上層細胞懸液,計數,預置細胞密度,接種于培養皿(1×106),做電生理應為5×105或更低。
(四)抑制膠質細胞生長
培養3-5d后,也有人認為培養7d后,用阿糖胞苷