Lipofectamine 3000簡稱LIP3000采用了脂質體納米微粒技術，提供了出眾的轉染性能和可重復的結果。它適用于各種難以轉染的細胞和常見的細胞，在保證轉染效率的同時也提高了細胞存活率。 Lipofectamine 3000試劑可以將難轉染細胞系的轉染效率提升10倍左右，同時還可以降低細胞的死亡率。

   另外，LIP 3000還具有多功能性，在某些情況下，它甚至可以取代電穿孔，由于提升了轉染后細胞的存活率，從而也簡化了工作流程。盡管Lipofectamine 2000十分受歡迎，但對于某些敏感的細胞，依然存在細胞毒性。為此，在Lipofectamine 3000的開發過程中，科學家們優化了轉染過程的四個步驟，并結合了先進的脂質體納米微粒技術。所以，Lipofectamine 3000減少了試劑的用量，并降低潛在的毒性風險。

LIP3000和LIP2000的區別是什么？轉染效率如何？

    通過科學家使用這兩種試劑來轉染來自各種組織的癌細胞。研究結果證實，Lipofectamine 3000試劑的轉染性能高于lip2000。使用Lipofectamine 2000，只有25%的癌細胞系被認為是容易轉染的（轉染效率高于50%），而使用Lipofectamine 3000，這個比例高達60%。 

此外，Lipofectamine 3000還促進了新的技術，如當下流行的基因組編輯。GeneArt TALs和CRISPR靶定了HepG2和U2OS細胞中的AAVS1位點。采用新的轉染試劑后，研究人員發現轉染效率、平均熒光強度和基因組切割改善。這些進步可實現更輕松的干細胞操作，增強轉基因的位點特異性插入。

什么是脂質體？ 
　脂質體脂質體是類似于細胞膜的具有高親和力的囊泡，將DNA放入其中（準確地說，DNA包裹在脂質體中）并導入細胞。大多數脂質體是脂質和亞精胺衍生物結合的類型。我嘗試了 Lipofectamin、Lipofectamin2000、Lip3000、Tlansfectine、Tlansfectum、DMRIEC、SuparFect、Fugen6、Tf-x、Do-fecto，將 Lipofectamin 與試劑結合使用?，F在可以轉染大多數貼壁細胞系。

脂質體的制備和轉染過程：
 待轉染的細胞應在前一天接種。具體轉染步驟如下： 
1. 1. 向 Opti-MEM50ul 中加入 DNA 溶液（1ug；即使在引入多個質粒時也總共 1ug）并混合。
2. 2. 將 Plus Regent (4ul) 添加到 opti-MEM50ul 中并與 1 混合。靜置15分鐘。在此期間，將細胞更換為無血清培養基（不包括抗生素）。
3. 3. 將 Lipofectoamine (2ul) 添加到 opti-MEM100ul 中并與 2 混合。靜置15分鐘。用顯微鏡強烈放大時可以觀察到細顆粒。
4. 用新的 600 ul 無血清培養基更換細胞培養基。3. 3. 添加脂質體并緩慢混合。
5. 2-4 小時后（2 小時即可）加入 800 ul 20% 血清培養基。
6. 再過 2-4 小時后，用 10% 血清培養基（不含抗生素）更換培養基。
（換液隔天重新電鍍） 
細胞轉染時的注意事項： 
 盡量使用聚苯乙烯設備（48孔板方便）。DNA 在小量制備水平上的純化程度較低。將其與 maxi 一起使用并與 CsCl 結合，或通過用苯酚/氯仿提取 minipresed DNA 并用 EtOH 沉淀來使用它。

2. 或者，如果在步驟 3 中形成了大的團塊，那是由于 DNA 純化程度低。如果在轉染后的第二天觀察到真菌污染，則主要認為是從質粒 DNA 或其管中攜帶的。更換10%血清培養基（不含抗生素）后，細胞在4小時左右即可恢復，因此可通過更換10%血清培養基（含抗生素）來防止污染。 

3. 通常在轉染后24 至 72 小時觀察到轉基因的表達。
 4.正常情況下峰值為48小時，但當細胞瞬時表達且細胞增殖能力高時，表達水平會相對低于24小時。在報告基因檢測中，轉染后的第二天，需要將48孔板稀釋1/3至2/3倍并重新鋪展，貼壁培養。正常的核受體配體反應在大約 8 到 12 小時內誘導報告產物。

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