酶聯免疫斑點法通常用于評估抗原特異的T細胞的功效,即檢測IFN-γ的釋放。酶聯免疫斑點法是一種非常靈敏的免疫檢測方法,它可以在單細胞水平檢測細胞因子的分泌。酶聯免疫斑點法是靈敏的細胞檢測方法之一,它檢測的靈敏度可以達到1:100 000個細胞。依賴于化學物質的分析,酶聯免疫斑點分析可以比傳統的ELISA靈敏20到200倍。
一、材料和試劑
1. ELISpotKits
(1)Mouse IFN-γ ELISpotkit(ALP)(Mabtech 3321-2A)
(2)Human IFN-γ ELISpotkit(ALP)(Mabtech 3420-2A)
注釋:以上的ELISpotKits可用性已經經過作者測試,用戶也可以用按自己的需要換別的替代。
2. 其它材料
(1)SIGMAFASTTM BCIP/NBT(Sigma B5655)
(2)1×Phosphate Buffered Saline(PBS)
(3)Wash Buffer:1×PBS,0.1%Tween-20(Santa cruz biotechnology,sc-29113)
(4)Phorbol 12-myristate13-acetate(PMA)(Sigma 79346)
(5)鈣離子載體Ionomycin(SigmaI 9657)
二、設備
1. biosys Bioreader 7000
三、步驟
1. 天:準備ELISpot板(無菌環境)
(1)用無菌的PBS,pH7.4,稀釋包被抗體(AN18)(16 μl 抗體稀釋在8 ml PBS,1:500)。
(2)把ELISpot板從包裝里拿出來,每個孔加75 μl 抗體溶液,4-8℃過夜孵育。
2. 第二天:在板上孵育細胞(無菌環境)
(1)倒掉過多的抗體,用無菌的WashBuffer(PBS-T)洗板5次,每個孔250 μl。
(2)每個孔加250 μl 的培養基,培養基中包含與用于懸浮細胞的培養液相同的10%的血清(通常是FBS),置于室溫孵育至少2個小時。
(3)倒掉培養基,并加入含有誘導物的細胞懸浮液。
一般要做如下幾組:不含誘導物的細胞、混有抗原(蛋白或多肽)的細胞和含PMA(10 ng/ml)和鈣離子載體Ionomycin(500 ng/ml)的細胞(陽性對照)。每個孔中的細胞數目決定于你的樣品中IFN釋放細胞的比例,通常是從2×104到2.5×105。如果靶細胞是多肽脈沖T2(T2pulsedwithpeptide)或瘤細胞,那么T細胞/靶細胞的比例需要滿足達到佳的檢測效果。
(4)把板置于37℃濕潤的培養箱,CO2的濃度為5%,培養12-48小時。在這期間不要挪動板,并設法避免蒸發。
3. 第三天:在板上孵育細胞(無菌環境)
(1)倒空板上的細胞,每個孔加250 μl 的水,保持在冰上10分鐘。
(2)用Wash Buffer洗板5次,每個孔250 μl。
(3)稀釋檢測抗體(R4-6A2-biotin)至濃度為0.5-1 μg/ml(4 μl 抗體稀釋在8 ml PBS,1:2 000)。用加有0.5%FBS的PBS稀釋。每個孔加75 μl,37℃下孵育2個小時。
(4)用Wash Buffer洗板5次,每個孔250 μl。
(5)用PBS-0.5%FBS稀釋Streptavidin-ALP(1:1 000),每個孔加100 μl,室溫孵育1個小時。
(6)用Wash Buffer洗板5次,每個孔250 μl。
(7)在10 ml ddH2O中溶解一片BCIP/NBT即配成底物溶液,每個孔加100 μl。
(8)把板放在黑暗中反應,直到有清楚的斑點顯示出來。
(9)用大量的自來水清洗終止顏色反應。如果有必要,把板從盤里取出來漂洗干凈底下的膜。
(10)晾干板,用biosys Bioreader 7000或在解剖鏡下(不推薦)檢測并統計斑點數。
(11)板在避光的條件下室溫保存。
ELISpot檢測INF-γ 酶聯免疫斑點