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轉化細胞凍存程序：

1） 單層細胞的消化。將經24~48小時培養已長成單層的傳代細胞培養物棄去生長液，加適量ATV，1~2分鐘后倒棄ATV，再加入少量ATV液，經0.5～1分鐘倒去ATV，室溫或37oC溫箱作用2~3分鐘，視細胞解離情況，拍打細胞培養瓶。使單層細胞*解離。SP2/0瘤細胞，待生長好后用吸管吹打，再經1 000轉/ 分離心lO分鐘。

2） 離心洗滌：向培養瓶內加5~1 0m1預冷的MEM使細胞懸浮，再將其吸出置滅菌離心管中，以1 000rpm 離心8～10分鐘后棄去上清液。

3） 細胞懸液的制備：向離心管內逐滴緩慢加入預冷的凍存保護液，使細胞濃度為150~400萬/ml，然后迅速分裝于安瓿瓶中，每瓶加量為lml。

4） 致冷凍結：將安瓿瓶放入帶有棉墊的紙盒或塑料盒內，直立置不同條件下致冷凍結果保存：

a、4oC兩小時后移至一2OoC作用2小時，再移入一4OoC4小時后在一7OoC下24小時投入液氮。

b， 一20oC4小時后移致一4OoC。C經4小時移人一7OoC冰箱24小時，投入液氮。

c， 一4OoC4小時后移入一70oC24小時后投入液氮。

d、一20oC4小時后移入一70oC經24小時后投入液氮中。

e、一70oC24小時后投入液氮中。

5） 液氮中保存：將凍結后的安瓿裝入預冷的小布袋中，投入液氮。為防止安瓿漂浮，可預先在小布袋中加入幾塊小卵石。

3. 玻璃化法

玻璃化保存（Vitrification）是一種超速冷凍方法。它是以極快的速度冷凍細胞，使細胞內外的游離水迅速形成玻璃樣物質，而不形成冰晶。這種保存方法既避免了由于慢速降溫時導致的鹽濃度升高，又防止了由于冰晶形成造成的物理損傷，可獲得較高存活率。

玻璃化首先由Luyet在1937年提出，他認為生命是生物活體系統的原子或其他結構元的一種特殊排列.并且輕微的排列位置擾動就會破壞平衡從而導致死亡，而結冰時的驅動力會破壞這種特殊的排列，這就是冰凍死亡的原因。玻璃

轉化細胞化比凍結固化方法引起的結構變化要小，因而是一種較理想的低溫保存途徑。

Tanshinone IIA 丹參酮IIA 568-72-9 HPLC≥98% 20mg/支

丹參酮IIA-磺酸鈉

Tanshinone I 丹參酮I 568-73-0 HPLC≥98% 20mg/支

Dihydrotanshinone I 二氫丹參酮I 二氫丹參酮 87205-99-0 HPLC≥98% 20mg/支

Cryptotanshinone 隱丹參酮 35825-57-1 HPLC≥98% 20mg/支

Sodium Danshensu 丹參素鈉 67920-52-9 HPLC≥98% 20mg/支

Oridonin 冬凌草甲素 28957-04-2 HPLC≥98% 20mg/支

Coenzyme Q10 輔酶Q10 303-98-0 HPLC≥98% 20mg/支

Tetrandrine 粉防己堿 漢防己甲素 518-34-3 HPLC≥98% 20mg/支

Fangchinoline 防己諾林堿 漢防已乙素 33889-68-8 HPLC≥98% 20mg/支
轉化細胞