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原代細胞對于細胞轉染而言，目前主要是轉染試劑(多為脂質體)的天下。磷酸鈣轉染的方法雖說有些out，但有些細胞還就認準這一套。不過，對于某些淋巴細胞而言，化學方法怎么都不奏效，那我們只能采取強硬手段，用電穿孔的方法進行轉染。

應用電穿孔時，一般都選擇恒定的電容，然后在不同的場強下轟擊細胞，以摸索*實驗條件。就大多數細胞而言，在電穿孔后能有20-50%的細胞存活率就OK，足以保證DNA的成功轉染。電穿孔通常在室溫下進行，之后將細胞置于冰上，以延長原代細胞膜孔道開放的時間。

與傳統的磷酸鈣和脂質體轉染相比，電穿孔具有操作簡便、轉染效率高等諸多優點。但它也受多種因素的影響。電壓太低時，細胞膜的改變不足以允許DNA分子通過，而電壓過高時又會造成細胞的損傷。這也就是常說的對細胞毒性大。因此轉染時所需的細胞要比其他方法更多。同時，轉染時所需的DNA也更多。如果想要穩定轉染的話，將DNA線性化后可能效果更好，因為線性DNA更容易整合到基因組DNA上。其他條件如緩沖液、轉染溫度等也會對轉染效果產生影響。

由于貼壁細胞必須附著在培養瓶的表面才能生長，因此懸浮細胞更易通過電穿孔方法進行轉染。不過，不同細胞間的*轉染參數變異較大，需要不斷摸索。如果有優化好的轉染步驟用來參考，那就不過了。

Bio-Rad公司zui近就新發布了12種原代細胞和細胞系的電穿孔步驟，幫你節省了優化的時間。這些細胞包括T細胞、嗜中性粒細胞和幾種B細胞淋巴瘤。除了這12種細胞，數據庫中還包括了很多常用細胞系如293、3T3、CHO的電穿孔步驟。這些步驟包括了優化過的電壓、電容、細胞密度、電轉緩沖液等，是在Bio-Rad 公司Gene Pulser Mxcell電穿孔系統和Gene Pulser緩沖液的基礎上進行開發的。