目錄:北京索萊寶科技有限公司>>基因工程>> I8070IPTG 異丙基-β-D-硫代半乳糖苷 基因工程
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IPTG 異丙基-β-D-硫代半乳糖苷 基因工程:IPTG為安慰性誘導物,X-gal為生色底物,二者共同用于藍白斑篩選。IPTG可誘導載體lac操縱子DNA區段合成β-半乳糖苷酶氨基端片段,該片段可與宿主細胞編碼的缺陷型β-半乳糖苷酶實現基因內互補(α互補)。實現α互補的細菌暴露IPTG,鋪在含有X-gal生色底物的培養基上,可形成藍色菌落。外源DNA插入質粒的多克隆位點后可破壞α互補作用,將產生白色菌落。
異丙基硫代半乳糖苷(IPTG)是一種作用*的誘導劑,不被細菌代謝而十分穩定,因此被實驗室廣泛應用。當有乳糖存在時,lac操縱子(元)即可被誘導。在這個操縱子(元)體系中,真正的誘導劑并非乳糖本身。乳糖進入細胞,經b-半乳糖苷酶催化,轉變為半乳糖。后者作為一種誘導劑分子結合阻遏蛋白,使蛋白構象變化,導致阻遏蛋白與O序列解離、發生轉錄。
材料
1、誘導表達材料
( 1 ) LB (Luria—Bertani))培養基酵母膏 (Yeast extract) 5g 蛋白胨 (Peptone) 10g
NaCl 10g 瓊脂 (Agar) 1-2%
蒸餾水 (Distilled water) 1000ml pH 7.0
適用范圍:大腸桿菌
( 2 ) IPTG 貯備液:2 g IPTG溶于10 mL 蒸餾水中,0 . 22 μm 濾膜過濾除菌,分裝成1 mL /份,-20 ℃ 保存。
( 3 ) l× 凝膠電泳加樣緩沖液:
50 mmol / L Tris -CI ( pH 6 . 8 )
50 mmol / L DTT
2 % SDS (電泳級)
0.1 % 溴酚藍
10 % 甘油
2、大腸桿菌包涵體的分離與蛋白純化材料
1 )酶溶法
(1)裂解緩沖液:
50 mmol / L Tris-CI ( pH 8 . 0 )
1 mmol / L EDTA
100 mmol / LNaCI
(2)50 mmol / L PMSF
(3)10 mg / mL 溶菌酶。
(4)脫氧膽酸。
(5)1 mg / mL DNase I。2 )超聲破碎法
( 1 ) TE 緩沖液。
( 2 ) 2×SDS -PAGE 凝膠電泳加樣緩沖液:
100 mmol / L Tris-HCI ( pH 8 . 0 )
100 mmol / L DTT
4 %SDS
0.2 % 溴酚藍
20 % 甘油
IPTG 異丙基-β-D-硫代半乳糖苷 基因工程實驗方案
1、外源基因的誘導表達
( 1 )用適當的限制性內切核酸酶消化載體DNA 和目的基因。
( 2 )按連接步驟連接目的基因和載體,并轉化到相應的宿主菌。
( 3 )篩選出含重組子的轉化菌落,提取質粒DNA 作限制性內切核酸酶圖譜,DNA 序列測定確定無誤后進行下一步。
( 4 )如果表達載體的原核啟動子為PL 啟動子,則在30 -32 ℃ 培養數小時,使培養液的OD600達0.4-0.6 ,迅速使溫度升42 ℃ 繼續培養3 -5h ;如果表達載體的原核啟動子為tac 等,則37 ℃培養細菌數小時達到對數生長期后加IPTG 終濃度為1 mmol / L。繼續培養3 -5h 。
( 5 )取上述培養液1 mL , 1000g 離心,1 min ,沉淀,加100 μL 聚丙烯酰胺凝膠電泳上樣緩沖液后,作SDS -PAGE 檢測。
2、大腸桿菌包涵體的分離與蛋白質純化
1 )細菌的裂解
常用方法有:① 高溫珠磨法;② 高壓勻漿;③ 超聲破碎法;④ 酶溶法;⑤ 化學滲透等。前三種方法屬機械破碎法,并且方法① 、② 已在工業生產中得到應用,后三種方法在實驗室研究中應用較為廣泛。下面介紹酶溶法和超聲破碎法的實驗步驟。
(1)酶溶法。常用的溶解酶有溶菌酶;β-1,3 -葡聚糖酶;β-1,6 -葡聚糖酶;蛋白酶;殼多糖酶;糖昔酶等。溶菌酶主要對細菌類有作用,而其他幾種酶對酵母作用顯著。
IPTG 異丙基-β-D-硫代半乳糖苷 基因工程主要步驟為:
① 4 ℃ ,5000rpm 離心,15 min ,收集誘導表達的細菌培養液(100 mL )。棄上清,約每克濕菌加3 mL 裂解緩沖液,懸浮沉淀。
注意事項:培養噬菌體時,Top agar中的添加量為:25 μl/3 ml(24 mg/ml)。含有IPTG的培養基4℃避光保存,須在1~2 周內使用。
保存:IPTG要2-8°C冷藏保存,配制好后保存于-20°C,室溫可放置一個月。遠離熱源及氧化劑。