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瓊脂糖-蛋白A蛋白G融合蛋白親和填料
1 、產品介紹
PAG NUPharose FF是將重組蛋白A蛋白G融合蛋白(r-PAG,Nuptec NRPA14)鍵合在瓊脂糖凝膠微球上形成的親和分離介質。與單獨的蛋白A或蛋白G分離介質相比,具有更寬廣的結合范圍,可以與人的所有IgG亞型、IgA、IgE、IgM結合,但不能與小鼠的IgA、IgM和血清白蛋白結合,適合用于鼠IgG單抗的提取和檢測。同時融合后的r-PAG降低對pH的依賴,允許在pH5-8進行結合。
2 、產品特點與技術指標
產品名稱 | 瓊脂糖-蛋白A蛋白G融合蛋白親和填料 |
基質 | 4%交聯瓊脂糖 |
配基 | 蛋白 A 蛋白G 融合蛋白, ≥6mg/mL |
粒徑范圍 a | 45~165 μm |
平均粒徑 | ~90 μm |
動態結合載量 b | ≥40 mg h-IgG/mL |
推薦工作流速 c | 60~150 cm/h |
最大流速與壓力 d | >900 cm/h |
使用 pH | pH 3~9(長期),pH 2~10(短期) |
儲存與運輸 | 20%乙醇,2~8 ℃保存,2~30 ℃運輸 |
注:a 90%體積以上的微球在此粒徑范圍;b DBC10%測試條件為:10%流穿,6min停留時間;c 推薦流速是指該流速可滿足大部分柱高下2~6min停留時間的使用條件,并非只能在該流速范圍內工作;d 10cm柱高下的最大測試流速。
3 、PAG 對各類抗體的親和性
PAG NUPharoseFF對多種哺乳動物抗體的親和性如下表所示,與單獨的蛋白A或蛋白G分離介質相比,蛋白A蛋白G融合蛋白具有更寬廣的結合范圍。
4 、使用方法參考
4.1 色譜柱裝填
以下闡述與層析系統連接時,填料的色譜柱裝填方法。
(1)所有需要用到的材料的溫度要與色譜操作的溫度一樣,液體最好做脫氣處理。
(2)填料用量計算:通過沉降定量填料體積,需要的沉降填料體積=柱體積×壓縮比(也稱壓縮因子)。沉降體積是指填料在20%乙醇保存液中自然沉降完-全讀取的穩定體積。PAGNUPharoseFF的壓縮比為1.15。為使達到裝柱比,可通過柱頭下壓的方法,也可以通過高流速壓柱。
(3)填料清洗:將填料懸液充分搖勻后量取相應體積,抽濾除去液體,并用約3倍填料體積的純化水洗滌,重復3次,以除去保存液。
(4)裝柱填料懸液準備:將填料轉移到適當的容器中,加入適量的裝柱液,制成50~75 v%的裝柱填料懸液,使用前攪勻。
(5)裝填前準備:在清洗干凈的層析柱下端加入裝柱液,以除去下墊片及層析柱下端的空氣,在柱內保留少量的蒸餾水,擰緊下堵頭,調整柱子使其垂直于地面。
(6)裝填:將攪勻后的填料懸液一次性緩慢倒入層析柱內(必要時使用裝柱器), 為避免引入氣泡,應使之沿層析柱內壁自然流下。將所有填料加入后, 用裝柱液將裝柱 器加滿,擰緊裝柱器上蓋,將柱子與層析系統連接。
(7)壓柱:使柱內填料自然沉降(或50~150 cm/h的低流速下沉降),待填料沉降完-全后(填料與液體的界面清晰),去除裝柱器,裝上上柱頭,并將柱頭下降至界面處;通過高流速(推薦流速見下表,注意柱壓不超過0.3MPa),繼續壓柱至界面清晰穩定,標記界面穩定時的柱高。停泵,打開柱頭上的閥門/堵頭,關閉柱底的閥門/堵頭,下壓柱頭至標記位置下方與壓縮比對應的位置,旋緊柱頭,裝柱完成。裝柱完成后,需用高流速平衡柱內的填料。
裝柱條件 | PAG NUPharose FF |
壓縮比 | 1.15 |
裝柱流速 | 300~600 cm/h |
4.2 柱效測定和評價
完成裝柱后、使用前可通過柱效測定和評價可以確認層析柱裝填質量。柱效通常用理論塔板高度(HETP)和非對稱因子(As)來評價。柱效測定可以采用丙酮或者NaCl作為樣品進行,按照下表配制樣品溶液和流動相。
樣品 | 1.0%丙酮 | 0.8~1.0 M NaCl |
樣品體積 | 1.0%柱體積 | 1.0%柱體積 |
流動相 | 純水 | 0.4 M NaCl |
流速 | 30 cm/h | 30 cm/h |
檢測器 | UV-280 nm | 電導 |
根據UV或者電導率曲線計算理論塔板高度(HETP)、理論塔板數(N)和非對稱 因子(As),公式如下:
HETP=L/N
N=5.54(VR/Wh)2 As=a/b
其中:L為柱高;VR為保留體積;Wh為半高峰寬;a為在10%峰高處的第一個半峰寬;b為在10%峰高處的第二個半峰寬。
一般來說,HETP的數值應小于填料平均粒徑的三倍(即HETP/D50<3 ,D50為填料的平均粒徑),As應在0.8~1.5之間。
4.3 平衡與上樣(Equilibration & Loading)
PB緩沖液(20mM PB+150 mM NaCl,pH=7.0~7.4)是較為常用和通用的緩沖體系。初始的緩沖液稱為平衡緩沖液,記為緩沖液A。
在上樣前,需用緩沖液A在操作流速下平衡層析柱,該過程通常需要5~10個柱體積的緩沖液A,以電導、pH等檢測信號參數不變且與緩沖液A對應為準。
上樣量可按“mg目標蛋白/mL填料"來設定,通常為DBC10%的50~80%,例如PAG NUPharose FF產品對人IgG的DBC10%為~40mg/mL,上樣量可控制為20~32mg/mL。在條件篩選階段,也可以降低上樣品,觀察結合、特異性和洗脫情況。上樣前需要對樣品進行離心(10000 g以上)、過濾(0.22或0.45μm)處理,以免堵塞色譜柱。
上樣后需要3~10個柱體積的緩沖液A再平衡層析柱。
4.4 洗脫與再生(Elution & Regeneration)
最-常用的洗脫方式為pH=2.5~3.0的甘氨-酸、檸檬酸鹽或乙酸鹽,該條件可基本將抗體完-全洗脫。但該pH較低,可能會使一些抗體失活或聚集,在條件篩選階段可逐步降低pH,篩選出收率可接受、抗體不失活或不聚焦的最高pH。也可以將洗脫液收集在弱堿性的緩沖液中,中和至中性,以縮短低pH條件的接觸時間。洗脫之后,可用5~10個柱體積的洗脫液對色譜柱進行再生。
4.5 在位清洗(CIP)
多次使用后會有沉淀蛋白,強疏水性蛋白,脂蛋白,脂質體等非特異吸附凝膠上,可以用0.1%去垢劑短時間清洗,如0.1% Triton X-100清洗2個柱體積,立即用結合緩沖液洗5-10個柱體積。也可以用70%乙醇清洗作同樣清洗。
4.6 填料保存
填料的初始保存液為20%乙醇,使用過后可繼續用20%乙醇保存。保存溫度在2~8℃為宜,不可凍存。
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