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藍膠-瓊脂糖
1 、產品介紹
Blue NUPharoseFF 是一種染料親和填料,通常稱為藍膠,Blue NUPharose FF的配基為三嗪類活性染料,特殊的結構決定了其與蛋白結合的復雜性,一般認為其通過靜電相互作用、疏水相互作用以及氫鍵等作用力與蛋白結合,適用于脫氫酶、激酶、血漿類蛋白等的分離純化。
2 、產品特點與技術指標
產品名稱 | 藍膠-瓊脂糖 | |
基質 | 6%交聯瓊脂糖 | 高剛性瓊脂糖凝膠 |
配基 | 汽巴藍 F3GA ,~8 μmol/mL | 汽巴藍 F3GA ,~15 μmol/mL |
粒徑范圍 a | 45~165 μm | 30~100 μm |
平均粒徑 | ~90 μm | ~60 μm |
動態結合載量 b | ~20 mg BSA/mL | ~30 mg BSA/mL |
推薦工作流速 | 60~300 cm/h | 60~300 cm/h |
最大流速與壓力 c | >1500 cm/h ,0.3 MPa | >1500 cm/h ,0.5 MPa |
使用 pH | 4~8.5(推薦的工作 pH),4~12(長期穩定);3~13(短期穩定) | |
化學穩定性 | 在以下溶液中穩定:常用的水相緩沖液、0.5 mol/L 氫氧化鈉、8 mol/L 尿素、6 mol/L 鹽酸胍、70%乙醇。 | |
儲存與運輸 | 2~8 °C ,20%乙醇,0.1 mol/L KH2PO4 ,pH 8.0 |
注:a90%體積以上的微球在此粒徑范圍;bDBC10%測試條件為:10%流穿,4 min 停留時間;c 10 cm 柱高下的最大測試流速。
3 、染料親和層析原理
Blue NUPharose FF 配基的特殊結構決定了其對蛋白質的吸附是一個復雜的過程。除對蛋白質分子上的二核苷酸鏈具有親和作用外,其蒽醌雜環與蛋白質分子非極性面之間存在疏水作用,芳香環上的磺酸基又使其具有離子交換基團的性質,可能導致蛋白與配基之間存在非均一結合。
因此對于不同的蛋白及配基和蛋白之間的結合情況也不盡相同。以BSA為例,pH值的變化對其在Blue NUPharose FF上的吸附影響非常顯著。隨著pH值的升高,吸附容量急劇下降。主要原因是隨著pH值的升高,蛋白質分子上帶有正電荷的區域將減小,導致與染料之間的靜電相互作用減弱,所以吸附量降低。當pH值在5.5~8.0降低時,蛋白質吸附容量的提高主要是由蛋白質分子中組-氨酸殘基引起的。而BSA分子中具有較高水平的組-氨酸殘基含量(17個組-氨酸殘基/581殘基),所以吸附量隨PH值的變化比較顯著。
4 、使用方法參考
4.1 色譜柱裝填
以下闡述與層析系統連接時,填料的色譜柱裝填方法。
(1)所有需要用到的材料的溫度要與色譜操作的溫度一樣,液體最好做脫氣處理。
(2)填料用量計算:通過沉降定量填料體積,需要的沉降填料體積=柱體積×壓縮比(也稱壓縮因子)。沉降體積是指填料在 20%乙醇保存液中自然沉降完-全讀取的穩定 體積。Blue NUPharoseFF的壓縮比為 1.15。為使達到裝柱比,可通過柱頭下壓的方法,也可以通過高流速壓柱。
(3)填料清洗:將填料懸液充分搖勻后量取相應體積,抽濾除去液體,并用約3倍填料體積的純化水洗滌,重復3次,以除去保存液。
(4)裝柱填料懸液準備:將填料轉移到適當的容器中,加入適量的裝柱液,制成50~75 v%的裝柱填料懸液,使用前攪勻。
(5)裝填前準備:在清洗干凈的層析柱下端加入裝柱液,以除去下墊片及層析柱下端的空氣,在柱內保留少量的裝柱液,擰緊下堵頭,調整柱子使其垂直于地面。
(6)裝填:將攪勻后的填料懸液一次性緩慢倒入層析柱內(必要時使用裝柱器),為避免引入氣泡,應使之沿層析柱內壁自然流下。將所有填料加入后,用裝柱液將裝柱器加滿,擰緊裝柱器上蓋,將柱子與層析系統連接。
(7)壓柱:使柱內填料自然沉降(或50~150 cm/h的低流速下沉降),待填料沉降完-全后(填料與液體的界面清晰),去除裝柱器,裝上上柱頭,并將柱頭下降至界面處;通過高流速(推薦流速見下表,注意柱壓不超過0.3MPa),繼續壓柱至界面清晰穩定,標記界面穩定時的柱高。停泵,打開柱頭上的閥門/堵頭,關閉柱底的閥門/堵頭,下壓柱頭至標記位置下方與壓縮比對應的位置,旋緊柱頭,裝柱完成。裝柱完成后,需用高流速平衡柱內的填料。
裝柱條件 | Blue NUPharose FF |
壓縮比 | 1.15 |
裝柱流速 | 600 cm/h |
4.2 柱效測定和評價
完成裝柱后、使用前可通過柱效測定和評價可以確認層析柱裝填質量。柱效通常用理論塔板高度(HETP)和非對稱因子(As)來評價.
4.3 平衡與上樣(Equilibration & Loading)
結合緩沖液常見的磷酸鹽、醋酸鹽等均可作為結合緩沖液,需根據樣品特點選擇合適的結合緩沖液(記為緩沖液A)。根據第3章節的染料親和層析原理,適當低的pH的結合緩沖液能促進蛋白的結合,一般情況下pH范圍在5.5~8.0之間宜。
實際使用過程中,上樣料液的體積往往較大,在上樣前,需用緩沖液A在操作流速下平衡層析柱,該過程通常需要5~10個柱體積的緩沖液A,以電導、pH 等檢測信號參數不變且與緩沖液A對應為準。
上樣量可按“mg 目標蛋白/mL填料"來設定,通常為DBC10%的50~80%,例如 Blue NUPharose FF產品對BSA的DBC10%為~20mg/mL,純化時上樣量可為10~16mg/mL。 除了DBC10%,也可以測試上樣流穿液中的目標蛋白確定上樣量。上樣前需要對樣品進行離心(10000 g以上)、過濾(0.22或0.45 μm)處理,以免堵塞色譜柱,樣品的pH需與上樣緩沖液保持一致。
上樣后需要3~10個柱體積的緩沖液 A 再平衡層析柱。
4.4 洗脫(Regeneration)
染料親和的樣品多種多樣,親和原理較為復雜,相應的洗脫方式也需隨樣品不同而改變。通常可以改變緩沖液的pH、離子強度(例如添加2 M NaCl)和極性(例如添加50%乙二醇)。純化酶時可加入低濃度的輔因子進行競爭洗脫。
4.5 再生(Regeneration)
可以采用高pH(0.1MTris,0.5 M NaCl,pH 8.5)和低pH(0.1MNaAc,0.5M NaCl,pH 4.5)交替清洗4~5次去除結合較強的蛋白質使層析柱再生。
4.6 在位清洗(CIP)
通常上述的再生過程可將填料徹-底清洗。若發生柱壓升高,或為了避免交叉污染,將金屬離子剝離后可進行在位清洗過程。可采用以下溶劑進行在位清洗:2mol/L NaCl,1mol/L NaOH、70%乙醇或30%異丙醇等。在位清洗可有效去除介質上的雜質,反向效果更佳。清洗后需用3~5 柱體積的純水除去上述溶劑。
4.7 填料保存
填料的初始保存液為20%乙醇,0.1mol/L KH2PO4,pH 8.0。使用過后可繼續相同的溶液保存。保存溫度在2~8 ℃為宜,不可凍存。
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