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參考價(jià): | 面議 |
- 12209ES08 產(chǎn)品型號(hào)
- Yeasen/翌圣生物 品牌
- 生產(chǎn)商 廠商性質(zhì)
- 上海市 所在地
訪問(wèn)次數(shù):294更新時(shí)間:2022-02-14 10:05:34
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- www.yeasen.com
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供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 規(guī)格 | 8 T |
---|---|---|---|
貨號(hào) | 12209ES08 | 應(yīng)用領(lǐng)域 | 醫(yī)療衛(wèi)生,食品,化工,生物產(chǎn)業(yè) |
主要用途 | 研究 |
產(chǎn)品信息
產(chǎn)品名稱 | 產(chǎn)品編號(hào) | 規(guī)格 | 價(jià)格/元 |
Hieff NGS® OnePot Pro PCR-Free DNA Library Prep Kit for Illumina® | 12209ES08 | 8 T | 1575.00 |
12209ES24 | 24 T | 5375.00 | |
12209ES96 | 96 T | 18875.00 |
產(chǎn)品描述
Hieff NGS® OnePot Pro PCR-Free DNA Library Prep Kit for Illumina®是針對(duì)Illumina®高通量測(cè)序平臺(tái)專業(yè)開(kāi)發(fā)設(shè)計(jì)的新一代酶切法建庫(kù)試劑盒。與傳統(tǒng)的建庫(kù)法比較,本品采用高質(zhì)量的片段化酶,擺脫了繁瑣的超聲過(guò)程,同時(shí)簡(jiǎn)化了操作流程,將片段化模塊與末端修復(fù)模塊合二為一,極大的降低了建庫(kù)的時(shí)間和成本。本試劑盒具有優(yōu)秀的文庫(kù)轉(zhuǎn)化率,可應(yīng)用于常規(guī)動(dòng)植物基因組、微生物基因組等樣本,同時(shí)能兼容FFPE DNA樣本的建庫(kù)。改進(jìn)版試劑盒使用了新的優(yōu)化的連接酶,極大的改善了接頭連接時(shí)的片段自連現(xiàn)象。
適用500 pg - 1 μg的基因組DNA、全長(zhǎng)cDNA等樣本
高質(zhì)量片段化酶,可隨機(jī)切割雙鏈DNA,酶切片段無(wú)偏好性
片段化、末端修復(fù)/加A一步完成
適用于FFPE DNA樣本
嚴(yán)格的批次性能與穩(wěn)定性質(zhì)控
產(chǎn)品組分
組分編號(hào)與名稱 | 12209ES08 | 12209ES24 | 12209ES96 | ||
12209-A | Smearase® Buffer | 80 μL | 240 μL | 960 μL | |
12209-B | Smearase® Enzyme | 40 μL | 120 μL | 480 μL | |
12209-C | Ligation Enhancer | 240 μL | 720 μL | 3×960 μL | |
12209-D | Novel T4 DNA Ligase | 40 μL | 120 μL | 480 μL |
運(yùn)輸與保存方法
冰袋運(yùn)輸。所有組分-20°C保存,有效期1年。
注意事項(xiàng)
一、關(guān)于操作
1. 為了您的安全和健康,請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。
2. 請(qǐng)于使用前將試劑盒各組分置于室溫解凍。解凍后上下顛倒數(shù)次充分混勻,短暫離心后置于冰上待用。
3. 配制各步驟反應(yīng)液時(shí)使用移液器吹打混勻或輕輕振蕩,劇烈振蕩可能會(huì)造成文庫(kù)產(chǎn)出下降。
4. 為避免樣品交叉污染,使用帶濾芯的槍頭,吸取不同樣品時(shí)請(qǐng)更換槍頭。
5. 在帶熱蓋的PCR儀中進(jìn)行各步驟反應(yīng),使用前應(yīng)預(yù)熱PCR儀至反應(yīng)溫度附近。
6. PCR產(chǎn)物因操作不當(dāng)極容易產(chǎn)生氣溶膠污染,進(jìn)而影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果準(zhǔn)確性。將PCR反應(yīng)體系配制區(qū)和PCR產(chǎn)物純化檢測(cè)區(qū)進(jìn)行強(qiáng)制性的物理隔離;使用移液器等設(shè)備;并定時(shí)對(duì)各實(shí)驗(yàn)區(qū)域進(jìn)行清潔(使用0.5%次氯酸鈉或10%漂白劑進(jìn)行擦拭清理),以保證實(shí)驗(yàn)環(huán)境的潔凈度。
二、關(guān)于DNA---片段化
1. 本試劑盒兼容范圍為500 pg - 1 μg Input DNA。應(yīng)盡可能使用A260/A280 = 1.8-2.0的高質(zhì)量Input DNA。
2. 若Input DNA中引入高濃度金屬離子螯合劑或其他鹽,可能會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn),建議將DNA稀釋在TE(10 mM Tris-HCl ,1 mM EDTA,pH 8.0)中進(jìn)行片段化。
3. 對(duì)于常規(guī)的高質(zhì)量基因組DNA,酶切時(shí)間參考表4,本試劑盒片段化偏好低,耐受各種GC含量的模板。對(duì)于不同降解程度的FFPE樣本,酶切時(shí)間參考表5。以上為時(shí)間,需客戶在自己的實(shí)驗(yàn)體系中進(jìn)行微調(diào),以達(dá)到好效果。
4.為保證優(yōu)質(zhì)精確的片段化效果,片段化反應(yīng)配制過(guò)程請(qǐng)于冰上操作。
5. 針對(duì)FFPE DNA建庫(kù),若樣本質(zhì)量不佳,客戶對(duì)當(dāng)前建庫(kù)產(chǎn)量不滿意,可選購(gòu)我公司的FFPE DNA Repair Reagent (Cat#12606)對(duì)FFPE DNA進(jìn)行修復(fù),具體使用方法可參考此產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)。該試劑可與片段化末修加A過(guò)程同時(shí)進(jìn)行,無(wú)需額外的操作。
三、關(guān)于接頭連接(Adapter Ligation)
1. 針對(duì)Illumina®測(cè)序平臺(tái),Yeasen提供48種Barcoded Adapters: Hieff NGS® Complete Adapter Kit for Illumina®, Set 1~Set 4(Cat#12615~Cat#12618);單端 96種 Index Primers: Hieff NGS® 96 Single Index Primers Kit for Illumina® , Set 1~Set 2 (Cat#12611~Cat#12612);雙端384 種UDI Primers: Hieff NGS® Stubby UDI Primer Kit for Illumina®(Cat#12404~Cat#12407)。
2. Adapter的質(zhì)量和使用濃度直接影響連接效率及文庫(kù)產(chǎn)量。Adapter用量過(guò)高可能會(huì)產(chǎn)生較多Adapter Dimer;用量較低可能會(huì)影響連接效率及文庫(kù)產(chǎn)量。表1列舉了使用本試劑盒,不同Input DNA量的Adapter使用量。
表1 500 pg-1 μg Input DNA的Adapter使用濃度
Input DNA | Adapter : Input DNA摩爾比 | Input DNA | Adapter : Input DNA摩爾比 |
1 μg | 10:1 | 50 ng | 100:1 |
500 ng | 20:1 | 25 ng | 200:1 |
250 ng | 40:1 | 1 ng | 200:1 |
100 ng | 100:1 | 500 pg | 400:1 |
【注】:Input DNA摩爾數(shù)(pmol)≈ Input DNA質(zhì)量(ng)/ [0.66 × Input DNA平均長(zhǎng)度(bp)]。
四、關(guān)于磁珠純化與分選(Bead-based Clean Up and Size Selection)
1. DNA---片段長(zhǎng)度分選步驟可選擇在末端修復(fù)/dA尾添加之前,或接頭連接后,或文庫(kù)擴(kuò)增后進(jìn)行。
2. 當(dāng)Input DNA質(zhì)量≥50 ng,您可選擇在接頭連接后分選;如Input DNA質(zhì)量<50 ng,建議您在文庫(kù)擴(kuò)增后進(jìn)行分選。
3. Ligation Enhancer中包含高濃度的PEG,會(huì)對(duì)雙輪分選產(chǎn)生顯著影響。因此,如在接頭連接后進(jìn)行長(zhǎng)度分選,必須先純化步驟,再進(jìn)行雙輪分選步驟;如在末端修復(fù)/dA尾添加之前或文庫(kù)擴(kuò)增后進(jìn)行長(zhǎng)度分選,可直接進(jìn)行雙輪磁珠分選步驟。
4. 磁珠使用前應(yīng)先平衡至室溫,否則會(huì)導(dǎo)致得率下降、分選效果不佳。
5. 磁珠每次使用前都應(yīng)充分振蕩混勻或使用移液器上下吹打充分混勻。
6. 轉(zhuǎn)移上清時(shí),請(qǐng)勿吸取磁珠,即使微量殘留都將影響后續(xù)文庫(kù)質(zhì)量。
7. 磁珠漂洗使用的80%乙醇應(yīng)現(xiàn)用現(xiàn)配,否則將影響回收效率。
8. 進(jìn)行長(zhǎng)度分選時(shí),初始樣品體積應(yīng)盡量≥100 μL,不足時(shí)請(qǐng)用超純水補(bǔ)齊。以防因樣品體積太小導(dǎo)致移液誤差增大。
9. 產(chǎn)物洗脫前應(yīng)將磁珠置于室溫干燥。干燥不充分容易造成無(wú)水乙醇?xì)埩粲绊懞罄m(xù)反應(yīng);過(guò)分干燥又會(huì)導(dǎo)致磁珠開(kāi)裂進(jìn)而降低純化得率。通常情況下,室溫干燥3-5 min足以讓磁珠充分干燥。
10. DNA純化或長(zhǎng)度分選產(chǎn)物如需保存,可使用TE Buffer洗脫,產(chǎn)物可于4°C可保存1-2周,-20°C可保存1個(gè)月。
六、關(guān)于文庫(kù)質(zhì)檢(Library Quality Analysis)
1. 通常情況下,構(gòu)建好的文庫(kù)可通過(guò)長(zhǎng)度分布檢測(cè)和濃度檢測(cè)來(lái)進(jìn)行質(zhì)量評(píng)價(jià)。
2. 文庫(kù)濃度檢測(cè)可使用:基于雙鏈DNA熒光染料的方法,如Qubit®、PicoGreen®等;基于qPCR定量的方法。
3. 文庫(kù)濃度檢測(cè)不可使用:基于光譜檢測(cè)的方法,如NanoDrop®等。
4. 使用qPCR方法進(jìn)行文庫(kù)濃度檢測(cè):Qubit®、PicoGreen®等基于雙鏈DNA熒光染料的濃度測(cè)定方法時(shí),無(wú)法有效區(qū)分單端連接Adapter的產(chǎn)物、兩端均未連接Adapter的產(chǎn)物以及其他不完整雙鏈結(jié)構(gòu)產(chǎn)物;qPCR定量基于PCR擴(kuò)增原理,僅定量樣品中兩端Adapter完整的文庫(kù)(即可測(cè)序的文庫(kù)),可排除單端或雙端都不連接Adapter的不可測(cè)序文庫(kù)干擾。
5. 文庫(kù)長(zhǎng)度分布檢測(cè),可通過(guò)Agilent Bioanalyzer 2100等基于毛細(xì)管電泳或微控流原理的設(shè)備進(jìn)行檢測(cè)。
使用方法
一、自備材料
1. 純化磁珠:Cat#12601,Hieff NGS® DNA Selection Beads或Cat#A63880,AMPure XP Beads或其他等效產(chǎn)品。
2. DNA質(zhì)控:Agilent Technologies 2100 Bioanalyzer或其他等效產(chǎn)品。
3. DNA Adapter:Yeasen提供48種Barcoded Adapters: Hieff NGS® Complete Adapter Kit for Illumina®, Set 1~Set 4(Cat#12615~Cat#12618);單端 96種 Index Primers: Hieff NGS® 96 Single Index Primers Kit for Illumina® , Set 1~Set 2 (Cat#12611~Cat#12612);雙端384 種UDI Primers: Hieff NGS® Stubby UDI Primer Kit for Illumina®(Cat#12404~Cat#12407)。或其他等效產(chǎn)品。
4. 其他材料:無(wú)水乙醇、滅菌超純水、TE Buffer(10 mM Tris-HCl,1 mM EDTA ,pH 8.0)、低吸附EP管、PCR管、磁力架、PCR儀等。
二、操作流程
圖1.OnePot Pro PCR-Free DNA建庫(kù)試劑盒操作流程
三、操作步驟
3.1 DNA----片段化/末端修復(fù)/dA尾添加(DNA Fragment/End Preparation/dA-Tailing)
該步驟將基因組DNA---片段化,同時(shí)進(jìn)行末端修復(fù)及dA尾添加。
1. 將表2中各試劑解凍后,顛倒混勻,置于冰上備用。
2. 于冰上配制表2反應(yīng)體系。
表2.DNA---片段化/末端修復(fù)/dA尾添加 PCR反應(yīng)體系
名稱 | 體積(μL) |
Input DNA | x |
Smearase® Buffer | 10 |
Smearase® Enzyme | 5 |
TE | Up to 60 |
3. 使用移液器輕輕吹打或低速振蕩混勻,并短暫離心將反應(yīng)液離心至管底。
4. 將上述PCR管置于PCR儀,設(shè)置表3所示反應(yīng)程序,進(jìn)行DNA---片段化,末端修復(fù)及dA尾添加反應(yīng)。
表3 DNA---片段化/末端修復(fù)/dA尾添加 PCR反應(yīng)程序
溫度 | 時(shí)間 |
熱蓋105°C | On |
4 °C | 1 min* |
30 °C | 3-20 min** |
65 °C | 20 min |
4 °C | Hold |
【注】:*DNA---片段化過(guò)程為有效控制片段化效果,避免過(guò)度酶切,反應(yīng)程序可預(yù)先設(shè)置4°C,待模塊溫度降至4°C時(shí),將PCR管放入PCR儀即可。**對(duì)于完整的基因組DNA,酶切時(shí)間參考表4,Input DNA 500-1000 ng,可根據(jù)需求,適當(dāng)延長(zhǎng)酶切時(shí)間2-4 min左右;對(duì)于質(zhì)量不一的FFPE DNA樣本,酶切時(shí)間參考表5。
表4.常規(guī)基因組DNA---片段化時(shí)間選擇表表
插入片段主峰大小 | 片段化時(shí)間 | 優(yōu)化范圍 |
600 bp | 8 min | 6-12 min |
350 bp | 10 min | 8-14 min |
250 bp | 12 min | 10-15 min |
200 bp | 15 min | 13-18 min |
150 bp | 20 min | 15-25 min |
表5.FFPE DNA---片段化時(shí)間選擇表
插入片段主峰大小 | 片段化時(shí)間 | DIN* |
250 bp | 9-13 min | > 8.0 |
250 bp | 8-11 min | 6.5-8.0 |
250 bp | 4-8 min | 4.2-6.5 |
250 bp | 3-6 min | 2.5-4.2 |
【注】:*DIN為DNA Integrity Number,是用Agilent 2200來(lái)定義FFPE DNA降解程度的一種方法,詳見(jiàn)圖2。
圖2.Agilent 2200定義不同降解程度樣本的DIN值
3.2 接頭連接(Adapter Ligation)
該步驟將3.1步驟的產(chǎn)物末端,連接特定的Illumina®接頭。
1. 根據(jù)Input DNA量按表1稀釋Adapter至合適濃度。
2. 將表6中各試劑解凍后顛倒混勻,置于冰上備用。
3. 于3.1步驟PCR管中配制表6所示反應(yīng)體系。
表6.Adapter Ligation PCR體系
名稱 | 體積(μL) |
dA-tailed DNA(3.1步驟產(chǎn)物) | 60 |
Ligation Enhancer | 30* |
DNA Adapter | 5** |
Novel T4 DNA Ligase | 5 |
【注】:*Ligation Enhancer比較粘稠,請(qǐng)上下顛倒、振蕩,充分混勻并瞬時(shí)離心后使用。
**本公司接頭濃度與常規(guī)商業(yè)化試劑盒一致,皆為15 μM。
【接頭添加計(jì)算舉例】:當(dāng)Input DNA為100 ng,Input DNA長(zhǎng)度為300 bp時(shí),接頭應(yīng)該添加多少?
第一步:計(jì)算Input DNA摩爾數(shù)。公式:Input DNA摩爾數(shù)(pmol)≈ Input DNA質(zhì)量(ng)/ [0.66 × Input DNA平均長(zhǎng)度(bp)];
Input DNA摩爾數(shù)(pmol)=100÷(0.66×300)=0.5 pmol;
第二步:計(jì)算接頭添加摩爾數(shù)。根據(jù)注意事項(xiàng)三表1查詢接頭添加比例;
根據(jù)表1,查得Input DNA 100 ng時(shí)接頭添加比例100:1,則接頭添加摩爾數(shù)=100×0.5 pmol=50 pmol;
第三步:計(jì)算接頭添加體積。接頭濃度=15 μmol/L(如使用其他接頭,濃度需要依據(jù)其他接頭濃度參數(shù));
接頭添加體積=接頭添加摩爾數(shù)(50 pmol)÷接頭濃度(15 μmol/L)=3.34 μL(注:15 μmol/L=15 pmol/μL)
綜上,接頭可添加3.4 μL,加1.6 μL水補(bǔ)齊至5 μL。(注:接頭加入體積不超過(guò)5 μL)。
4. 使用移液器輕輕吹打或振蕩混勻,并短暫離心將反應(yīng)液收集至管底。
5. 將PCR管置于PCR儀中,設(shè)置表7所示反應(yīng)程序,進(jìn)行接頭連接反應(yīng)。
表7.Adapter Ligation PCR反應(yīng)程序
溫度 | 時(shí)間 |
熱蓋105°C | Off |
20°C | 15 min |
4°C | Hold |
【注】:當(dāng)Input DNA量較低,實(shí)驗(yàn)效果不理想時(shí),可嘗試將連接時(shí)間延長(zhǎng)一倍。
3.3 連接產(chǎn)物磁珠純化(Post Ligation Clean Up)
該步驟使用磁珠對(duì)3.2步驟的產(chǎn)物進(jìn)行純化或分選。純化可除去未連接的Adapter或Adapter Dimer等無(wú)效產(chǎn)物。
3.3.1 純化操作步驟:
1. 準(zhǔn)備工作:將Hieff NGS® DNA Selection Beads磁珠由冰箱中取出,室溫平衡至少30 min。配制80%乙醇。
2. 渦旋振蕩或充分顛倒磁珠以保證充分混勻。
3. 吸取60 μL Hieff NGS® DNA Selection Beads(0.6×,Beads:DNA=0.6:1)至Adapter Ligation產(chǎn)物中,室溫孵育5 min。
4. 將PCR管短暫離心并置于磁力架中分離磁珠和液體,待溶液澄清后(約5 min),小心移除上清。
5. 保持PCR管始終置于磁力架中,加入200 μL新鮮配制的80%乙醇漂洗磁珠,室溫孵育30 sec后,小心移除上清。
6. 重復(fù)步驟5,總計(jì)漂洗兩次。
7. 保持PCR管始終置于磁力架中,開(kāi)蓋空氣干燥磁珠至剛剛出現(xiàn)龜裂(不超過(guò)5 min)。
8. 將PCR管從磁力架中取出,進(jìn)行洗脫:
1)如產(chǎn)物無(wú)需進(jìn)行片段分選,直接加入21 μL ddH2O,渦旋振蕩或使用移液器輕輕吹打至充分混勻,室溫靜置5 min。【注:如純化產(chǎn)物如需保存,可使用TE Buffer洗脫】。將PCR管短暫離心并置于磁力架中靜置,待溶液澄清后(約5 min),小心移取20 μL上清至新PCR管中,切勿觸碰磁珠。
2)如產(chǎn)物需進(jìn)行雙輪分選,加入102 μL ddH2O,渦旋振蕩或使用移液器輕輕吹打至充分混勻,室溫靜置5 min。【注:如純化產(chǎn)物如需保存,可使用TE Buffer洗脫】。將PCR管短暫離心并置于磁力架中靜置,待溶液澄清后(約5 min),小心移取100 μL上清至新PCR管中,切勿觸碰磁珠。
3.3.2 雙輪分選操作步驟:
1. 準(zhǔn)備工作:將Hieff NGS® DNA Selection Beads磁珠由冰箱中取出,室溫平衡約30 min。配制80%乙醇。
2. 請(qǐng)渦旋振蕩或充分顛倒磁珠以保證混勻。
3. 根據(jù)DNA---片段長(zhǎng)度要求,參考表8向上述100 μL DNA上清中加入第一輪分選磁珠,渦旋混勻或移液器吹打10次混勻。
表8.磁珠文庫(kù)分選比例
DNA文庫(kù)插入片段大小 | 150-250 bp | 200-300 bp | 300-400 bp | 400-500 bp | 500-600 bp |
DNA文庫(kù)大小 | 250-350 bp | 350-450 bp | 450-550 bp | 550-650 bp | 650-750 bp |
第一輪體積比(Beads:DNA) | 0.80× | 0.70× | 0.60× | 0.55× | 0.50× |
第二輪體積比(Beads:DNA) | 0.20× | 0.20× | 0.20× | 0.15× | 0.15× |
【注】:表中“×"表示樣品DNA體積。如文庫(kù)插入片段長(zhǎng)度為250 bp,樣品DNA體積為100 μL,則第一輪分選磁珠使用體積為0.70×100 μL=70 μL;第二輪分選磁珠使用體積為0.20×100 μL=20 μL;表中所比例是針對(duì)于Adapter Ligated Insert DNA(Post Ligation),如果用戶在接頭連接前進(jìn)行分選,請(qǐng)采用Hieff NGS® DNA Selection Beads(Cat#12601)說(shuō)明書(shū)中的比例。
4. 室溫孵育5 min。
5. 將PCR管短暫離心并置于磁力架中,待溶液澄清后(約5 min),小心轉(zhuǎn)移上清到干凈的離心管中。
6. 參考表8向上清中加入第二輪分選磁珠。
7. 渦旋混勻或移液器吹打10次混勻,室溫靜置5 min。
8. 將PCR管短暫離心并置于磁力架中,待溶液澄清后(約5 min),小心移除上清。
9. 保持PCR管始終處于磁力架中,加入200 μL新鮮配制的80%乙醇漂洗磁珠,室溫孵育30 sec,小心移除上清。
10. 重復(fù)步驟9。
11. 保持PCR管始終處于磁力架中,開(kāi)蓋干燥磁珠至剛剛出現(xiàn)龜裂(約5 min)。
12. 將PCR管從磁力架中取出,加入適量21 μL ddH2O,渦旋振蕩或使用移液器輕輕吹打充分混勻,室溫靜置5 min。
13. 將PCR管短暫離心并置于磁力架中分離磁珠和液體。待溶液澄清后(約5 min),小心轉(zhuǎn)移20 μL上清至干凈的管中。
3.4 文庫(kù)質(zhì)量控制
通常情況下,構(gòu)建好的文庫(kù)可通過(guò)濃度檢測(cè)和長(zhǎng)度分布檢測(cè)來(lái)進(jìn)行質(zhì)量評(píng)價(jià),具體請(qǐng)參見(jiàn)注意事項(xiàng)六。
3.5 參考實(shí)例
使用Hieff NGS® OnePot Pro PCR-Free DNA Library Prep Kit for Illumina®對(duì)200 ng Human gDNA (NA12878) 樣本進(jìn)行酶切建庫(kù)檢測(cè),片段化結(jié)果見(jiàn)圖3。
圖3.OnePot Pro PCR Free DNA建庫(kù)試劑盒酶切200 ng Human gDNA樣本(不同酶切時(shí)間片段化效果檢測(cè))
HB210203