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供貨周期 | 現貨 | 規格 | 10 rxn |
---|---|---|---|
貨號 | 11004ES10 | 應用領域 | 醫療衛生,化工,生物產業 |
產品信息
產品名稱 | 貨號 | 規格 | 價格(元) |
Hieff Mut™ Multi Site-Directed Mutagenesis Kit多點突變試劑盒 | 11004ES10 | 10 T | 1228.00 |
產品描述
Hieff Mut™ Multi Site-Directed Mutagenesis Kit 是基于Hieff Clone® 快速克隆技術的定點突變系統。使用本試劑盒,可一次性向目標質粒上三至五個不連續位點(相距超過50bp)同時引入定點突變。該試劑盒由兩個模塊組成:Hieff® II Pfu DNA Polymerase擴增模塊和Hieff Clone® 快速克隆模塊。Hieff® II Pfu DNA Polymerase超高的保真度顯著降低了擴增過程中引入新突變的可能性,其長片段擴增能力,廣泛適用于長度小于20 kb的任何質粒擴增。Hieff Clone® 快速克隆系統利用高效的同源重組反應替代傳統的退火成環反應。因此使用Hieff Mut™ Multi Site-Directed Mutagenesis Kit進行DNA定點突變時,引物設計更加靈活,且擴增反應以指數方式進行,極大減少了模板使用量,有利于原始甲基化模板的*降解。
Hieff Mut™ Multi Site-Directed Mutagenesis Kit中的重組酶Exnase MultiS經過優化,專門針對多堿基進行定點突變。此外,如擴增產物特異,其DpnI消化產物可不進行DNA純化而直接用于重組反應。高度優化的反應緩沖液、快捷的操作流程以及*的成功率,使得Hieff Mut™ Multi Site-Directed Mutagenesis Kit成為DNA多點突變試劑盒。
應用范圍
DNA定點突變
注:如使用本品對質粒進行定點突變,請使用甲基化酶無缺陷的宿主菌 (例如DH5α、JM109)擴增原始質粒!
產品組成
編號 | 組分 | 產品編號/規格 |
11004ES10 (10 T) | ||
11004-A | 2×Hieff® II PCR buffer | 1.25 mL |
11004-B | dNTP Mix (10 mM each) | 50 μL |
11004-C | Hieff® II Pfu DNA Polymerase (1 U/μL) | 50 μL |
11004-D | Dpn I (10 U/μL) | 50 μL |
11004-E | 2× Hieff Clone® MultiS Enzyme Premix | 100 μL |
運輸與保存方法
冰袋(wet ice)運輸。產品-20℃保存。有效期1年。
不連續多堿基(相距超過50bp)定點突變實驗流程(以不連續三堿基為例)
實驗流程概覽(圖一)
圖一:使用Hieff Mut™ Multi Site-Directed Mutagenesis Kit進行不連續三堿基定點突變實驗流程
1. 引物設計
向質粒三個不連續位點引入定點突變,只需設計三對引物將質粒分段擴增即可。引物設計基本原則為:在每個待突變位點處設計部分反向互補的擴增引物對。每對正反向引物5’端包含15-21 bp反向互補區域(GC含量40%-60%為佳),各引物待突變位點至引物3’端區域Tm值高于60℃為佳。所需引入突變可以包含在互補區域內 (需要兩條引物上均引入點突變),也可以包含在任一條引物的非互補區域 (只需在一條引物上引入點突變),請勿將突變位點置于引物末端。以向pUC18引入三堿基突變為例,引物設計具體方案如圖二所示。
圖二:向質粒引入不連續多堿基定點突變引物設計示意圖
注:待突變位點B、C處的正反向擴增引物設計方式與位點A 處的引物設計方式一致。計算引物Tm值時,應計算待突變位點至引物3’端這一區域內的堿基,待突變位點至引物5’端區域內的堿基不應參與計算。
2. 目標質粒分段擴增
以待突變位點A、B、C為界,將質粒分為AB、BC段和CA段。使用Hieff® II Pfu DNA Polymerase對各段分別進行擴增。AB段擴增引物對為:待突變位點A正向擴增引物和待突變位點B反向擴增引物;BC段擴增引物對為:待突變位點B正向擴增引物和待突變位點C反向擴增引物;CA段擴增引物對為:待突變位點C正向擴增引物和待突變位點A反向擴增引物。
2.1 配制PCR反應體系
反應各組分解凍后請充分搖勻,使用完畢后及時放回-20℃。2×Hieff® II PCR buffer請勿長時間敞口放置。
為了增加擴增特異性,反應體系配制過程請于冰水浴中進行。為了防止Hieff® II Pfu DNA Polymerase的校對活性降解引物,請將聚合酶最后加入反應體系中。
推薦反應體系如下:
ddH2O | Up to 50 μL |
2×Hieff® II PCR buffer | 25 μL |
dNTP Mix (10 mM each) a | 1 μL |
模板DNA b | Optional |
引物1 (10 μM) | 2 μL |
引物2 (10 μM) | 2 μL |
Hieff® II Pfu DNA Polymerase (1 U/μL) c | 1 μL |
a. 請勿使用dUTP和帶有尿嘧啶的引物或模板。
b 在各片段能正常擴增的前提下,應盡量減少質粒模板使用量,推薦≤1 ng。待擴增質粒長期放置、反復凍融會導致模板質粒斷裂、開環或降解,因此推薦使用新鮮制備的質粒作為模板。
c. 推薦的酶的終濃度為1 U/50 μl反應。可將Hieff® II Pfu DNA Polymerase在0.5-2 U/50 μl之間進行優化,但不要超過2 U/50 μl,尤其當擴增子長度大于5 kb時。
2.2 PCR擴增反應
推薦PCR反應條件:
循環步驟 | 溫度 | 時間 | 循環數 |
預變性 | 95℃ | 30 sec | 1 |
變性a 退火b 延伸c | 95℃ 60℃~72℃ 72℃ | 15 sec 15 sec 30-60 sec/kb | 30 d |
*延伸 | 72℃ | 5 min | 1 |
a. 對于大多數質粒,變性溫度使用95℃即可。
b. Hieff® II Pfu DNA Polymerase能夠促進模板和引物高效退火。一般來說,退火溫度設置為引物Tm值即可。如果需要,可以建立一個溫度梯度反應去尋找引物模板結合的最適溫度。退火時間太長可能導致擴增產物在膠上呈現彌散狀。
c. 對于大多數擴增反應,延伸過程可在72℃進行。長的延伸時間有助于提高擴增產量。
d. 為了防止擴增過程中引入非目標突變,強烈建議擴增循環數≤35。如果擴增效率良好的話,推薦擴增循環數應≤30。
反應結束后取少量擴增產物進行瓊脂糖電泳檢測。如目標質粒正確擴增,則可進行下步實驗。
3. 擴增產物DpnI消化,去除甲基化模板質粒
因上述擴增產物中包含原始模板質粒,為防止其在轉化后形成假陽性轉化子,必須在進行重組環化之前進行DpnI消化。
推薦反應體系如下:
DpnI | 1 μL |
擴增產物 | 40~50 μL |
將上述反應體系置于37℃恒溫反應1~2小時。如產物擴增特異,產物條帶單一,DpnI消化產物無需純化,可直接用于后續重組反應。如擴增不特異,DpnI消化結束后應膠回收純化目標擴增產物。
4. 重組反應
4.1 配制重組反應體系
質粒AB、BC和CA段擴增產物末端分別包含相對應的*一致的一段序列,因此在Exnase MultiS催化下三擴增產物末端可以發生同源重組,完成擴增產物環化過程。于冰水浴中,將下列組分依次加到無菌的1.5 ml Eppendorf管或PCR管的管底。如果不慎將液體粘在管壁,請務必通過短暫離心使其沉入管底。體系配制完成后,用移液器上下輕輕吹打幾次混勻各組分,避免產生氣泡 (請勿劇烈震蕩或者渦旋混勻)。
ddH2O | Up to 20 μL |
AB段DpnI消化產物 | x ng |
BC段DpnI消化產物 | x ng |
CA段DpnI消化產物 | x ng |
2× Hieff Clone® MultiS Enzyme Premix | 10 μL |
Exnase MultiS多點突變重組反應體系最適DNA使用量為每片段0.03 pmol。該摩爾數對應的DNA質量可由以下公式粗略計算獲得:
DpnI消化產物最適使用量 = [0.02 × 目標質粒堿基對數] ng (0.03 pmol)
例如,AB段長度為1 kb,BC段長度為2 kb,CA段長度為5 kb。則DpnI消化產物最適使用量為:AB段0.02 × 1000 = 20 ng;BC段0.02 × 2000 = 40 ng;CA段0.02 ×5000 = 100 ng。
注:DNA量太多或者太少都將降低環化效率。常用的吸光度測量法極易受DNA純度、DNA稀釋液pH等因素影響,測定值和DNA實際濃度往往偏差較大。因此,請務必通過瓊脂糖電泳預先確認DNA濃度,盡量嚴格按照推薦量配制反應體系。當DpnI消化產物最適使用量計算值不足10 ng或者超過200 ng時,加入10ng或200 ng即可。DpnI消化產物不純化直接用于重組反應時,使用量不應超過反應總體積的1/5,即4μl。
4.2 重組反應
1)將上述體系置于50℃反應 20-50 min。
2)待反應完成后,立即將反應管置于冰水浴中冷卻5 min。
3)之后,反應產物可直接進行轉化;也可儲存于-20℃,待需要時解凍轉化。
5. 反應產物轉化、涂板、克隆鑒定
1)取10 μl冷卻反應液,加入到100 μl感受態細胞中,輕彈管壁數下混勻,在冰上放置30 min。
2)42℃熱激45~90秒,冰水浴孵育2 min。
3)加入900 μl SOC或LB培養基,37℃孵育10min充分復蘇。
4)37℃搖菌45 min。
5)取100 μl菌液均勻涂布在含有適當抗生素的平板上。將平板倒置,于37℃過夜培養。
注:我們推薦您使用轉化效率>108 cfu/μg的感受態細胞。如果感受態轉化效率<108 cfu/μg (例如用CaCl2法新鮮制備的感受態轉化效率通常在106-107 cfu/μg之間),請將培養菌液在5,000 rpm離心3 min收集菌體,用100 μl LB培養基重懸后全部涂板。
注意事項
1)引物設計時5’端反向互補區盡量選擇無重復序列,且GC含量比較均勻的區域。當這一區域內GC含量在40%~60%范圍之內時,重組環化效率將達到最大。如這部分區域GC含量高于70%或者低于30%,重組環化效率會受到較大影響。
2)當兩突變位點相距小于50bp時,應將其視為一個突變位點,將兩突變引入同一條/對引物進行實驗。
3)DpnI只能識別甲基化DNA,請務必使用從甲基化酶無缺陷的宿主菌中擴增的質粒作為PCR模板。
4)質粒PCR擴增結果需高度特異,雜帶較多會影響實驗結果。
5)重組反應體系中應盡量避免金屬絡合劑(如EDTA)的帶入。因此,建議將DNA純化產物溶解在pH8.0的ddH2O中保存(常規膠回收試劑盒中的洗脫液可用pH8.0的ddH2O替代),請勿使用TE進行DNA保存。
6)冷卻后的反應產物應在1h內進行轉化,且轉化前保持在冰水浴中。如需儲存,于-20℃凍存。盡量避免室溫較長時間放置或4℃長期儲存。
7)反應產物的轉化體積不應超過感受態細胞體積的1/10,否則會降低轉化效率。另外,當轉化的DNA濃度太高時,會抑制轉化反應。將重組反應產物稀釋5倍后取1/5進行轉化。
8)為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。
9)本產品僅作科研用途!
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