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主要用途

藍色熒光（DAPI）染色體核型分析試劑是一種旨在通過使用熒光染料DAPI與染色體DNA的結合并發出熒光檢測信號來顯示染色體帶型特征而構成細胞染色體核型的而經典的技術方法。該技術經過精心研制、成功實驗證明的。該熒光分析是細胞遺傳學中的研究技術。適用于各種生長中的動物或人體細胞。產品即到即用，性能穩定，熒光清晰。

技術背景

作為細胞DNA染色劑之一的4,6-二咪基－4-聯苯基吲哚（4,6-diamidino-2-phenylindole； DAPI）特異性地與DNA雙螺旋的凹槽部分發生相互作用，從而與DNA的雙鏈緊密結合。結合后產生的熒光基團的吸收峰是358nm而散射峰是461nm，正好是UV（紫外光）的激發波長356nm，使得DAPI成為了一種常用的熒光檢測信號。通過DAPI的染色顯示其帶型特征，然后根據體細胞中全套染色體形態特征和大小順序排列，并依次配對、分組，構成該個體的核型或染色體組型，從而可以識別和分析染色體結構和數量的異常，成為產前診斷或腫瘤細胞遺傳學的工具。

產品內容

清理液（Reagent A）         毫升

滯態液（Reagent B）     毫升

低滲液（Reagent C）     毫升

固定液A（Reagent D）     毫升

固定液B（Reagent E）     毫升

預備液（Reagent F）     毫升

染色液（Reagent G）     毫升

抗淬滅劑（Reagent H）      毫升

產品說明書                              1份

保存方式

保存滯態液（Reagent B）和染色液（Reagent G）在－20℃冰箱里，其余的保存在4℃冰箱里；滯態液（Reagent B）、染色液（Reagent G）和抗淬滅劑（Reagent H），避免光照，有效保證6月

用戶自備

胰蛋白酶乙二胺四乙酸混合液：用于細胞脫離

*細胞培養液：用于細胞培養

無離子水：用于清洗染色的載玻片

50毫升錐形離心管：用于細胞處理的容器

37℃恒溫水槽：用于預熱試劑溶液

臺式離心機：用于沉淀細胞

小型染色缸：用于載玻片染色的容器

載玻片：用于細胞涂片和染色

顯微鏡：用于觀察細胞分裂和染色體組型

實驗步驟

實驗開始前，將試劑盒里的固定液A（Reagent D）和B（Reagent E）從4℃的冰箱里取出，移取A液xx毫升和B液xx毫升加入到50毫升錐形離心管，混勻后標記成為固定工作液，置入冰槽里。同時在37℃恒溫水槽里預熱清理液（Reagent A）、滯態液（Reagent B）、低滲液（Reagent C）。然后進行下列操作。

• 限定細胞在有絲分裂中期（METAPHASE）

1）貼壁細胞處理

• 抽去鋪滿生長細胞的75cm2細胞培養瓶的培養液
• 加入xx毫升清理液（Reagent A）到細胞培養瓶，覆蓋培養瓶表面，
• 小心抽去清理液（Reagent A）
• 加入3毫升用戶自備的胰蛋白酶乙二胺四乙酸混合液，鋪滿整個培養平面
• 放進37℃培養箱孵育3分種
• 手擊振動培養瓶，使細胞脫落
• 加入15毫升用戶自備的*細胞培養液，充分混勻
• 移出10毫升混勻物到新的75cm2細胞培養瓶
• 加入10毫升用戶自備的*細胞培養液到上述新的75cm2細胞培養瓶
• 放進37℃細胞培養箱孵育16至20小時
• 小心抽去鋪滿70％生長細胞的75cm2細胞培養瓶的培養液
• 加入10毫升用戶自備的*細胞培養液
• 加入xx微升37℃預熱的滯態液（Reagent B），輕輕搖動細胞培養瓶，使其混勻
• 放進37℃細胞培養箱，孵育2小時
• 在顯微鏡觀察下，細胞開始收縮變圓，表明細胞處于有絲分裂
• 手擊振動拍打培養瓶，使細胞脫落
• 移出含有滯態液（Reagent B）的細胞培養液到50毫升錐形離心管
• 加入xx毫升清理液（Reagent A）到培養瓶，清洗整個細胞表面
• 移出清理液合并到50毫升錐形離心管
• 加入3毫升用戶自備的胰蛋白酶乙二胺四乙酸混合液，鋪滿整個培養平面
• 置入37℃培養箱3分種
• 手擊振動培養瓶，使細胞脫落
• 加入10毫升用戶自備的*細胞培養液，充分混勻
• 移出混勻物合并到50毫升錐形離心管
• 放進臺式離心機離心5分鐘，速度為300g
• 小心抽去上清液（保留0.3毫升）
• 手指輕彈混勻細胞

2）懸浮細胞處理

• 準備好108懸浮細胞（淋巴細胞、白細胞、骨髓細胞等）
• 移入到50毫升錐形離心管
• 放進臺式離心機離心5分鐘， 速度為300g
• 小心抽去上清液
• （選擇步驟）加入xx毫升 清理液（Reagent A），混勻顆粒群
• （選擇步驟）放進臺式離心機離心5分鐘， 速度為300g
• （選擇步驟）小心抽去清理液（Reagent A）
• 加入15毫升用戶自備的RPMI 1640*細胞培養液，充分混勻細胞顆粒群
• 轉移到到新的75cm2細胞培養瓶
• 放進37℃細胞培養箱孵育16至20小時
• 移入到50毫升錐形離心管
• 放進臺式離心機離心5分鐘， 速度為300g
• 小心抽去上清液
• 加入10毫升用戶自備的RPMI 1640*細胞培養液，混勻細胞顆粒群
• 加入xx微升37℃預熱的滯態液（Reagent B），混勻
• 放進37℃細胞培養箱，孵育2小時
• 在顯微鏡觀察下，細胞開始收縮，表明細胞處于有絲分裂
• 放進臺式離心機離心5分鐘， 速度為300g
• 小心抽去上清液
• 加入10毫升用戶自備的RPMI 1640*細胞培養液，充分混勻
• 放進臺式離心機離心5分鐘，速度為300g
• 小心抽去上清液（保留0.3毫升）
• 手指輕彈混勻細胞

二．低滲處理有絲分裂細胞

• 用滴管一滴一滴加入xx毫升37℃預熱的低滲液（Reagent C）到50毫升錐形離心管，輕輕搖動
• 放進37℃細胞培養箱孵育15分鐘
• 放進臺式離心機離心5分鐘，速度為300g
• 小心抽去上清液（保留0.3毫升）
• 手指輕彈混勻細胞

三．固定細胞

1．用滴管一滴一滴加入xx毫升預冷的固定工作液到50毫升錐形離心管，輕輕搖動

2．放進冰槽里孵育至少5分鐘

3．放進臺式離心機離心5分鐘，速度為300g

4．小心抽去上清液（保留0.3毫升）

5．手指輕彈混勻細胞

6．重復上述步驟1至5，直到沉淀細胞顆粒群為白色（越白越好）

7．加入5毫升固定工作液到50毫升錐形離心管，充分混勻

四．染色體載片制作

1． 先將載玻片置于冰箱里冷卻，然后放在實驗臺上，并排放上5至10張

2． 從高達30至60厘米處向下滴上3滴細胞混勻液在載玻片上，立即吹散開，使其散開或然后拿起載玻片，輕輕拍擊手掌（注意：參見注意事項8）

3． 在顯微鏡下觀察有絲分裂中期的細胞

4． 空氣中晾干載玻片（注意：參見注意事項8）

5． 可以保存在70％酒精里，放進4℃冰箱長達一年。剩下的在固定液里的細胞可以長期保存在－20℃冰箱里

五．染色

• 加入xx毫升預備液（Reagent F）到小型染色缸（Coplin jar）
• 放進晾干的載玻片孵育30秒
• 取出載玻片，加上xx微升染色液（Reagent G），鋪滿整個細胞表面
• 置入暗室3分鐘
• 放進含有預備液（Reagent F）的小型染色缸孵育30秒
• 取出載玻片，用用戶自備的無離子水輕輕沖洗3次
• 在暗室里晾干
• 加上xx微升抗淬滅劑（Reagent H）
• 封片
• 在熒光顯微鏡紫外波長下，觀察呈現藍色的細胞染色體
• 將熒光圖像轉換為黑白圖像，顯示G帶條帶進行分析