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實驗試劑
1. 75%酒精
2. 5% FCS-RPMI-1640*培養液與RPMI-1640*培養液
3. ConA或PHA
4. IL-1標準品：倍比稀釋成至少6個不同濃度值。
實驗設備
1. 3H-TdR、β-液閃汁數儀，微量細胞收集儀
2. 解剖刀、剪、單皿、研磨工具(玻璃勻漿器，不誘鋼網或者毛玻璃片，用于研磨小鼠胸腺)
3. 96孔細胞培養板
4. 刻度吸管，毛細吸管，刻度離心管、離心機、細胞計數板，倒置顯微鏡，加樣器(頭)，50%CO2培養箱，超凈工作臺
實驗材料
1. 小鼠：BALB/C或C57BL/6小鼠，6-10周齡，雌雄均可。
2. IL-1待測樣品：倍比稀釋成至少6個不同濃度值。
實驗步驟
1. 準備工作與ConA或PHA亞適劑量的確定
測定樣品前必須作ConA或PHA的劑量曲線，觀察其對小鼠胸腺細胞增殖的影響，選擇一個既能夠激活胸腺細胞，但又不引起其明顯增殖的合適劑量，即亞適劑量。
1) 在96孔培養板各孔中加入小鼠胸腺細胞，100μl/孔；
2) 加入不同濃度的ConA(或PHA)，100μl/孔，使其終濃度分別為0.5μg/ml，1μg/ml ，2μg/ml，5μg/ml，10μg/ml，各設三復孔，以不加ConA的培養液作對照；
3) 置37℃，5% CO2培養箱中培養72h，收獲前12h加入3H-TdR，0.5μci/50μl/孔；
4) 用微量細胞收集儀收集細胞于玻璃纖維紙上，用β-液閃計數儀測定各孔cpm值；數據(cpm)以三個復孔平均值 標準差表示，
5) 數據(cpm)以三個復孔平均值 標準差表示，繪制ConA劑量曲線，據此選擇亞適劑量，通常為0.2-2.0μg/ml)(終濃度)；
2. 操作步驟
1) 拉頸處死小鼠，浸泡于75%酒精中3-5min，消毒處理；
2) 無菌操作取出小鼠胸腺，放入含有RPMI-1640*培養液的平皿中；
3) 將胸腺剪碎(或研磨工具磨碎)，無菌紗布過濾，制成單個胸腺細胞懸液；
4) 用PRMI-1640*培養液洗滌上述細胞2次，1500r/min離心10min，然后用5% FCS-RPMI-1640*培養液調細胞濃度為1.5×107/ml；
5) 在96孔培養板各孔中加入小鼠胸腺細胞，100μl/孔；
6) 將倍比稀釋后的標準品與待測樣品加到上述各孔中，100μl/孔，一式3份，設培養液對照及有絲分裂原對照。
7) 將預先確定的亞適劑量的ConA(終濃度約0.2~2.0μg/ml)或PHA(終濃度為約0.5~4.0μg/ml)加入96孔培養板中，100μl/孔。
8) 置37℃，5% CO2培養箱中培養72h，收集*-12h加入3H-TdR 0.5uci/50ul/孔。
9) 用微量細胞收集儀收集細胞于玻璃纖維紙上，用β液閃計數儀測定各孔3H-TdR摻入量(cpm值)。
注意事項
1. 所制備的小鼠胸腺細胞存活率應>95%。
2. 標準品及待測樣品應以1:2開始至少6個倍比稀釋度。
3. 加樣時，應以低濃度到高濃度順序加入，且不可共用加樣器頭。
4. 由于受其他細胞因子的影響，本法特異性受到一定限制。
5. 亦可用D10G4.1細胞(小鼠T輔助細胞克隆)代替上述小鼠胸腺細胞進行IL-1生物活性檢測，基本方法相同。但由于D10G4.1細胞對IL-1的敏感性大大增強，而對IL-2相對不敏感，且對IL-1的敏感性比對IL-2的敏感性大100~1000倍，故本法敏感性與特異性均較小鼠胸腺細胞增殖法。
