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PAGE膠制備方法

2015-6-8  閱讀(1348)

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實驗試劑


1. 5x樣品緩沖液(10ml):0.6ml 1mol/L的Tris-HCl(pH6.8),5ml 50%甘油,2ml 10%的SDS,0.5ml巰基乙醇,1ml 1%溴酚藍,0.9ml蒸餾水??稍?℃保存數周,或在-20℃保存數月。

2. 凝膠貯液:在通風櫥中,稱取丙烯酰胺30g,甲叉雙丙烯酰胺0.8g,加重蒸水溶解后,定容到100ml。過濾后置棕色瓶中,4℃保存,一般可放置1個月。

3. pH8.9分離膠緩沖液: Tris 36.3g ,加1mol/L HCl 48ml,加重蒸水80ml使其溶解,調pH8.9,定容至100ml, 4℃保存。

4. pH6.7濃縮膠緩沖液: Tris 5.98g ,加1mol/L HCl 48ml,加重蒸水80ml使其溶解,調pH6.7,定容至100ml, 4℃保存。

5. TEMED(四乙基乙二胺)原液

6.10%過硫酸銨(用重蒸水新鮮配制)

7. pH8.3 Tris-甘氨酸電極緩沖液:稱取Tris 6.0g,甘氨酸28.8g,加蒸餾水約900ml,調pH8.3后,用蒸餾水定容至1000ml。置4℃保存,臨用前稀釋10倍。

8. 考馬斯亮藍G250染色液:稱100mg考馬斯亮藍G250,溶于200ml蒸餾水中,慢慢加入7.5ml 70%的過氯酸,zui后補足水到250ml,攪拌1小時,小孔濾紙過濾。


錨點

實驗設備


電泳儀,電泳槽,水浴鍋,搖床。


錨點

實驗步驟


1.   樣品制備

將蛋白質樣品與5X樣品緩沖液(20ul+5ul)在一個Eppendorf管中混合。放入100℃加熱5-10min,取上清點樣。

2.   分離膠及濃縮膠的制備

1)   將玻璃板、樣品梳、Spacer用洗滌劑洗凈,用ddH2O沖洗數次,再用乙醇擦拭,晾干;

2)   將兩塊洗凈的玻璃板之間加入Spacer,按照Bio-Rad Mini Ⅱ/Ⅲ說明書提示裝好玻璃板;

3)   按如下體積配制10%分離膠8.0 ml,混勻;

ddH2O 3.0 ml

1.0 mol/LTris-HCl pH=8.8 2.1 ml

30% Acr-Bis 2.8 ml

10% SDS 80 ul

10%AP 56 ul

TEMED 6 ul

4)   向玻璃板間灌制分離膠,立即覆一層重蒸水,大約20 min后膠即可聚合;

5)   按如下體積配制6%濃縮膠3.0 ml,混勻;ddH2O 1.0 mol/LTris-HClpH=6.8 30% Acr-Bis

2.0 ml 400 ul 600 ul

10% SDS 10% AP TEMED

36ul 24ul 4ul

6)   將上層重蒸水傾去,濾紙吸干,灌制濃縮膠,插入樣品梳;

7)   裝好電泳系統,加入電極緩沖液,上樣20 μl;

8)   穩壓200V,溴酚藍剛跑出分離膠時,停止電泳,約需45 min~1hr.

9)   卸下膠板,剝離膠放入染色液中,室溫染色1~2 hr;加入脫色液,置于80 rpm脫色搖床上,每20 min更換一次脫色液(10 ml 冰乙酸;45 ml乙醇;45 ml蒸餾水)至*脫凈。

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