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標簽: 組織病理
組織學技術包括、組織學制片技術、胚胎學制片技術、組織化學技術、熒光組化及免疫組化技術、組織培養技術、各種特殊顯微技術、電鏡組織學技術。組織學技術不但應用于組織學本學科,并且廣泛應用于其他多學科,如生物學、解剖學、病理學、腫瘤學、法醫學、臨床診斷學等。
實驗方法
- 石蠟切片法
- 冰凍切片
實驗方法原理 | 石蠟切片是zui基本的切片技術,冰凍切片和超薄切片等都是在石蠟切片基礎上發展起來的。蘇木素與伊紅對比染色法(簡稱H.E.對染法)是組織切片zui常用的染色方法。這種方法適用范圍廣泛,對組織細胞的各種成分都可著色,便于全面觀察組織構造,而且適用于各種固定液固定的材料,染色后不易褪色可長期保存。 |
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實驗材料 | 小鼠 |
試劑、試劑盒 | 中性福爾馬林固定液 酒精 二甲苯 石蠟 蜂蠟 蘇木精染液 伊紅酒精溶液 鹽酸酒精溶液 甘油蛋白粘片劑 中性樹膠 卡諾固定液 |
儀器、耗材 | 切片機 恒溫箱 蠟杯 酒精燈 解剖剪 培養皿 鑷子 單面刀片 包埋盒 染色缸 蓋玻片 載玻片 玻片盤 顯微鏡 溫度計 水浴鍋 |
實驗步驟 | 一、材料準備:
甲醛(37%-40%,市售,本所購買即為此濃度)100 mL 磷酸氫二鈉6.5 g 磷酸二氫鉀(鈉)4 g 雙蒸水900 mL
鹽酸1份 70%酒精100份
蛋白50 ml 甘油50 ml 水楊酸鈉(防腐劑)1 g
二、實驗步驟:
2. 固定
3. 洗滌
5. 透明
(2)由于乙醇與石蠟不相溶,而二甲苯既能溶于乙醇又能溶于石蠟,所以脫水后還要經過二甲苯以過渡。
6. 透蠟
7. 包埋
8. 切片
11. 染色
12. 水洗
13. 分化
14. 漂洗
17. 脫水Ⅱ
18. 透明
19. 封藏:中性樹膠封存
(6)染色結果:細胞核被蘇木素染成藍色,細胞質被伊紅染色呈粉紅色。
三、免疫組化染色
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注意事項 | 一、取材注意事項 1. 取材動作要迅速,不宜作太久的拖延以免組織細胞的成分、結構等發生變化。 2. 切片材料應根據需要觀察的部位進行選擇,盡可能不要損傷所需要的部分。二、固定注意事項 1. 一般固定液,都以新配為好,配好后應貯存在陰涼處,不宜放在日光下,以免引起化學變化,失去固定作用。 2. 有些混合固定液的成份之間會發生氧化還原作用,一定要在使用前才混合,如果混合太早,固定時就沒有作用了。 3. 固定材料時,固定液必須充足,一般為材料塊的20~30倍,有些水分多的材料,中間應更換1~2次新液。 4. 材料固定完畢后,保存于嚴密緊塞或加蓋的容器里,同時在容器外上標簽,并隨同材料在溶液中投入相應的標簽,以免相互混淆。標簽上注明固定液、材料來源、日期等。標簽上的文字,應用黑色鉛筆或繪圖黑墨水書寫。三、脫水注意事項 1. 脫水必須在有蓋的玻璃品中進行,防止吸收空氣中的水分。 2. 在更換高一級的脫水劑時,不要移動材料以免損壞,可用吸管吸出器皿中的脫水劑,再用吸水吸盡器皿內剩余液,然后于皿中加入高一級脫水劑。 3. 在低濃度酒精中,每級停留不宜太長,否則易使組織變軟,助長材料的解體。 4. 在高濃度或純酒精中,每級停留的時間也不宜太長,否則會使組織變脆,影響切片。 5. 如需過,應停留在70%酒精中。 6. 脫水必須*,否則不易透明,甚至使透明劑內出現白色混濁現象。四、透明注意事項 1. 使用透明劑時,要隨時蓋緊蓋子,以免空氣中的水分進入。 2. 更換每級透明劑,動作要迅速,一方面為了不使材料塊干涸,另一方面能避免吸收濕氣。 3. 在透明過程中,如果材料周圍出現白色霧狀,說明材料中的水未被脫凈,應退回純酒精中重新脫水,然后再透明。
五、透蠟注意事項 1. 盡量保持在較低溫度中進行,以石蠟不凝固為度。 2. 透蠟溫度要恒定,不可忽高忽低。 3. 操作要迅速,力求在zui短的時間內完成石蠟透入過程,以免引起組織變硬、變脆、收縮等。 |