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PCR 產物純化回收試劑盒
quick Midi Purification Kit
在高離序鹽存在的情況下,DNA 片斷選擇性的吸附于離心柱內的硅基質膜上,再通過一系列快速的漂洗-離心的步驟,去蛋白液和漂洗液將引物、核苷酸、蛋白、酶等雜質去除,后低鹽、高 pH 值的洗脫緩沖液將純凈 DNA 從硅基質膜上洗脫。
1. 離心吸附柱內硅基質膜全部采用進口特制吸附膜,柱與柱之間吸附量差異極小,可重復性好??朔藝a試劑盒膜質量不穩定的弊端。
2. 使用了結合液,不含傳統結合液的碘化納鈉和高氯酸鹽,不抑制回收后酶切、連接克隆等下游反應。
3. 結合液調制成為了黃顏色,便于監測 pH 值變化從而達到理想結合效果,大大提高回收效率。
4. 簡單快速、使用方便。
注意事項:
1. 所有的溶液應該是澄清的,如果環境溫度低時溶液可能形成沉淀,此時不應該直接使用,可在 37℃水浴加熱幾分鐘,即可恢復澄清,使用前應該恢復到室溫.
2. 儲存于低溫(4℃或者-20℃)會造成溶液沉淀,影響使用效果。
3. 避免試劑長時間暴露于空氣中產生揮發、氧化、pH 值變化,各溶液使用后應及時蓋緊蓋子。
4. 結合液中含有刺激性化合物,操作時要戴乳膠手套,避免沾染皮膚,眼睛和衣服。若沾染皮膚、眼睛時,要立即用大量清水或者生理鹽水沖洗。
5. 回收純化的 DNA 片段一般在 100bp 到 40kb 之間,過長、過短片段的回收效率迅速降低。
6. 回收 DNA 的量和起始 DNA 的量,洗脫體積,DNA 片斷大小有關。一般 1-20μg, 100bp-5kb 的DNA 片段,回收率可達 95%。
7. pH 值≤7.5 時,吸附膜吸附 DNA 的效率高。如果待純化產物含有堿性物質過多,造成和結合液混和后pH 偏高,會導致回收率降低?;旌秃?,如果結合液依舊保持黃色,說明 pH 正常;如果變成橘紅色或者淡紫色,說明 pH 偏高,可加 5-10μl 3M 醋酸鈉
(pH5.2)將 pH 值調到 5-7(黃色)。
洗脫液 EB 不含有螯合劑 EDTA, 不影響下游酶切、連接等反應。也可以使用水洗脫, 但應該確保 pH 大于 7.5pH 過低影響洗脫效率。用水洗脫,DNA 片段應該保存在-20℃。DNA 片段如果需要長期保存,可以用 TE 緩沖液洗脫(10mM Tris-HCl,1mM EDTA,pH 8.0),但是 EDTA 可能影響下游酶切反應,使用時可以適當稀釋。
自備試劑:無水乙醇
操作步驟:
提示:次使用前請先在漂洗液 WB 中加入量無水乙醇,加入后請及時打鉤標記已加入乙醇,以免多次加入!
1. 每 100μl PCR 擴增后體系或者酶切后體系加入 500μl 結合液 BB,充分混勻。(如果初始體系小于 100μl,請事先用雙蒸水調整至100μl)。
2. 將上一步所得溶液加入吸附柱 EC 中(吸附柱放入收集管中),室溫放置 1min,12,000rpm 離心 30-60sec,倒掉收集管中的廢液。
3. 加入 500μl 漂洗液 WB(請先檢查是否已加入無水乙醇!),12,000rpm 離心 30sec,棄掉廢液。
4. 重復操作步驟 3。
5. 將吸附柱 EC 放回空收集管中,12,000rpm 離心 2min,盡量除去漂洗液, 以免漂洗液中殘留乙醇抑制下游反應。
6. 取出吸附柱 EC,放入一個干凈的離心管中,室溫放置數分鐘。
7. 在吸附膜的中間部位滴加洗脫緩沖液 EB(洗脫緩沖液事先在 65-70℃水浴中加熱效果更好),室溫放置 2min,12,000rpm 離心1min。如果需要較多量 DNA,可將得到的溶液重新加入吸附柱中,離心 1min。(注意:洗脫體積越大,洗脫效率越高。如果需要DNA 濃度較高,可以適當減少洗脫體積, 但是小體積不應少于 30μl,體積過小降 DNA 洗脫效率,減少產量。)
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